Таким образом, при использовании хладоограждающего раствора №9 показатели функционального состояния лейкоцитов при –20°С остаются на высоком уровне в течение 21 суток, после чего отмечается их ухудшение.
Данные полученные в лизосомально-катионном тесте свидетельствуют о том, что уровень среднего цитохимического коэффициента (СЦК) у размороженных нейтрофилов при их хранении в растворе №9 после 21 суток холодового воздействия (–20°С) не изменяется - исходный уровень СЦК составляет 2,3±0,6 у. е (n=10, М±σ), после отогрева - 1,9±0,4 у. е. Следовательно содержание микробицидных белков в клетке остается на прежнем уровне (рис. 3.2.3.2).
Под защитой хладоограждающего раствора №9 после размораживания через 21 сутки сохранялась тенденция к увеличению численности популяции Т-лимфоцитов (85,2±3,3%; М±σ, n=5) в сравнении с уровнем до замораживания (75,0±8,4%), однако количество В-лимфоцитов уменьшалось (р<0,05): исходно - 8,7±2,7% (М±σ, n=5), после отогрева 1,7±0,9%, т. е. данная популяция лимфоцитов теряет свою стабильность.
Определение содержания растворенного в биосреде кислорода показало, что через 21 сутки нахождения лейкоцитов при –20°С отмечается снижение (р<0,05) концентрации кислорода в среднем на 0,7 мг/л (рис. 3.2.3.3).

Рисунок 3.2.3.3 Содержание растворенного кислорода в смеси лейкоцитных концентратов (ЛК; n=10) с криопротекторным раствором (КР) №9 до и после хранения при –20°С в течение 21 суток
+ - p<0,05.
Применение хладоограждающего раствора №9, содержащего в исходной концентрации ГМБТОЭМ - 28%, ОМЭПС - 0,15% и бидистиллированную воду до 100 мл позволяет сохранить лейкоциты в условиях субумеренно-низкой температуры (–20°С) в течение 21 суток.
| Рисунок 3.2.1.1 Эозинположительный (красный) и эозинотрицательный лейкоциты до температурного воздействия
|
|
|
| Рисунок 3.2.2.1 Сегментоядерный нейтрофил с фагоцитированными микрочастицами латекса до воздействия отрицательной температуры
|
|
|
| Рисунок 3.2.3.1 Сегментоядерный нейтрофил с фагоцитированной микрочастицей латекса после 21 суток экспозиции при –20°С в хладоограждающем растворе №9
|
|
|
| Рисунок 3.2.3.2 Сегментоядерные нейтрофилы с активными гранулами, содержащими катионные белки после 21 суток экспозиции при –20°С в хладоограждающем растворе №9
|
3.2.4 Определение интенсивности процесса перекисного окисления липидов и антиоксидантной активности методом индуцированной хемилюминесценции в лейкоцитных концентратах, перенесших воздействие субумеренно-низкой температуры (–20ºС) в криоконсервирующем растворе №9 разной продолжительности
При изучении влияния каждого ингредиента хладоограждающего раствора №9 на уровень ПОЛ-АОА лейкоцитов показано (табл. 3.2.4.1), что ОМЭПС (0,15%) снижает ПОЛ и АОА, а криопротектор смешанного действия ГМБТОЭМ (28%) повышает (р<0,05) уровень ПОЛ и АОА.
Таблица 3.2.4.1 Влияние ингредиентов хладоограждающего раствора №9 на уровень ПОЛ и антиоксидантный потенциал ядросодержащих клеток крови (n=6, М±σ)
Исследуемый субстрат | Показатели хемилюминограммы | ||||
Imax | S | tg(-2α) | a | Z | |
Лейкоцитный концентрат | 115,0±26,6 | 843,8±142,9 | 26,2±5,5 | 0,25±0,02 | 7,5±0,5 |
Лейкоцитный концентрат 1:1 с ГМБТОЭМ 28% | 160,2±23,6 * | 1065,0±172,1 * | 40,2±5,5 * | 0,21±0,02 * | 6,6±0,5 * |
Лейкоцитный концентрат 1:1 с ОМЭПС 0,15% | 80,5±10,8 * | 675,2±88,2 * | 20,9±3,2 * | 0,26±0,04 | 7,6±0,6 |
Примечание. * - различие с величиной показателя лейкоцитных концентратов p<0,05.
Установлено (таблица 3.2.4.2), что при смешивании лейкоцитов с криоконсервирующим раствором №9 уровень ПОЛ не изменяется, т. к. максимальная интенсивность быстрой вспышки (Imax), отражающая потенциальную способность биологического объекта к свободно радикальному окислению и светосумма (S) за 30 сек, свидетельствующая о содержание радикалов соответствуют уровню клеток без раствора. Повышение (р<0,05) показателя tg(-2α) свидетельствует об увеличении антиоксидантного потенциала клеток перед замораживанием.
Таблица 3.2.4.2 Показатели хемилюминограммы лейкоцитов (n=6, М±σ), перенесших воздействие умеренно-низкой температуры (–20°С) под защитой криоконсервирующего раствора №9 в течение 21 суток
Лейкоцитный концентрат | Показатели | ||||
Imax | S | tg(-2α) | a | Z | |
до замораживания | 117,7±20,3 | 899,3±181,5 | 23,4±2,2 * | 0,25±0,01 * | 7,6±0,2 * |
до замораживания с раствором №9 | 139,0±30,6 | 939,7±150,3 | 32,9±7,0 | 0,22±0,01 | 6,6±0,4 |
через 21 сутки хранения | 158,0±27,4 | 1022,0±182,6 | 30,9±3,9 | 0,22±0,005 | 6,5±0,2 |
Примечание. * - различие с величиной показателя до замораживания с хладоограждающим раствором p<0,05.
У клеток отогретых через 21 сутки хранения при –20°С уровень ПОЛ и АОА не отличаются от таковых до замораживания с хладоограждающим раствором.
3.3 Структурно-функциональные показатели лейкоцитов, перенесших воздействие умеренно-низкой температуры (–40ºС)
3.3.1 Сохранность лейкоцитов, перенесших воздействие умеренно-низкой температуры (–40ºС) без применения криозащитного раствора
Подсчет количества клеток в камере Горяева показал (М±σ; n=10) что в первые минуты после отогрева сохранность лейкоцитов по сравнению с исходным уровнем (до замораживания) составляет 68,2±1,1% и продолжает стремительно ухудшаться с увеличением времени экспозиции отогретых клеток при комнатной температуре. Количество клеток с неповрежденной мембраной (устойчивой к эозину) после отогрева в первые минуты составляет 15,2±3,2%, через 5 минут - снижается до 10,1±2,5%.
Анализ морфологического состава лейкоцитного концентрата (рис. 3.3.1.1), подвергнутого воздействию умеренно-низкой температуры (–40ºС) без применения криоконсервантов, показал, что в отогретых биообъектах во всех случаях преобладают «голые» ядра. Сохранность гранулоцитов после отогрева в первые минуты составляет 16,2±1,1%. Другие показатели клеток, в ввиду их низкой жизнеспособности определить не удалось.
3.3.2 Структурно-функциональная сохранность лейкоцитов, перенесших воздействие умеренно-низкой температуры (–40ºС) в течение 1 суток в криоконсервирующих растворах №12-18
На следующем этапе исследования оценивали функциональные показатели ядерных клеток крови, подвергнутых воздействию умеренно-низкой температуры –40°С в течение 1 суток в предложенных хладоограждающих растворах №12-18 (табл. 2.2.1) с целью выбора наиболее эффективного.
Установлено (табл. 3.3.2.1), что абсолютное и относительное число клеток снижается (р<0,05) только в опытах с раствором №17 и не изменяется при использовании растворов №15 и №16.
Хладоограждающие растворы №13 и №16 обеспечивают устойчивость клеточных мембран к витальному красителю эозину более чем у 80% (от исходного уровня) лейкоцитов.
Анализ морфологического состава отогретых лейкоцитов показал, что сохранность гранулоцитов исходного уровня отмечается в опытах с растворами №13 (абсолютное значение) и №16 (абсолютное и относительное значения). В тех случаях, когда уровень гранулоцитов снижался, отмечалось соответствующее повышение уровня лимфоцитов и моноцитов (т. к. подсчет производился на 100 клеток).
Сохранность фагоцитарной активности нейтрофилов в опытах с раствором №13 была самая высокая - у 95,9±4,5% (от исходного уровня) отогретых клеток отмечалась способность фагоцитировать частицы латекса (рис. 3.3.2.1). При использовании раствора №16 более 70% гранулоцитов сохраняли фагоцитарную активность.
Таким образом, оценивая морфофункциональное состояние отогретых лейкоцитов по примененным методикам, лучшие результаты из всех испытуемых хладоограждающих растворов были получены в опытах с раствором №13, содержащим в исходной концентрации криопротектор ГМБТОЭМ - 30%, антигипоксант фумарат натрия - 2,8%, лимонную кислоту - 0,06 % и бидистиллированную воду до 100 мл.
Исследование содержания в нейтрофилах активированных кислородных метаболитов с помощью НСТ-теста показало (М±σ, n=9), что у нейтрофилов, находящихся под защитой хладоограждающего раствора №13 после 1 суток воздействия температуры –40°С наблюдается существенное повышение содержания АКМ. Так, если исходное количество НСТ-положительных клеток составляло 21,7±4,0%, то после размораживания оно увеличивалось (p<0,05) до 67,3±6,2%, т. е. возросло примерно в 3 раза.
Таблица 3.3.2.1 Показатели лейкоцитов (М±σ), перенесших воздействие умеренно-низкой температуры (–40°С) в течение 1 суток в предложенных хладоограждающих растворах
Номер раст- вора | n | Показатели | ||
до замораживания | после отогрева | после отогрева в % от уровня до замораживания | ||
Количество лейкоцитов в 1 мкл | ||||
12 | 13 | 8538±460 | 8507±372 | 97,1±3,0 |
13 | 12 | 9356±1585 | 9056±1399 | 94,2±3,7 |
14 | 14 | 6520±1807 | 5950±1324 | 91,6±9,3 |
15 | 6 | 6850±1917 | 7050±1785 | 99,3±1,6 |
16 | 6 | 11350±1369 | 11130±1227 | 98,3±4,1 |
17 | 6 | 20600±8654 | 17300±5305* | 88,3±14,0+ |
18 | 5 | 27240±4053 | 23140±2442 | 85,4±7,1+ |
Количество эозинорезистентных лейкоцитов в % | ||||
12 | 13 | 98,1±0,7 | 51,9±4,9* | 52,8±5,1+ |
13 | 12 | 96,1±4,6 | 80,9±9,3* | 84,3±6,6+ |
14 | 14 | 98,4±0,7 | 62,6±9,7* | 54,9±8,4+ |
15 | 6 | 97,5±2,7 | 58,2±4,2* | 60,4±2,9+ |
16 | 6 | 98,5±0,5 | 80,4±3,8* | 82,0±4,1+ |
17 | 6 | 97,5±2,7 | 43,5±16,4* | 51,0±7,4+ |
18 | 5 | 97,4±0,5 | 77,0±10,1* | 79,0±10,1+ |
Количество гранулоцитов в % | ||||
12 | 13 | 27,7±6,5 | 15,1±3,1* | 61,3±6,1+ |
13 | 12 | 28,5±6,4 | 26,4±4,9 | 88,9±9,0+ |
14 | 14 | 30,1±4,1 | 17,4±3,7* | 57,1±6,5+ |
15 | 6 | 15,5±1,6 | 12,8±1,3* | 85,0±11,5+ |
16 | 6 | 34,5±14,8 | 36,4±15,9 | 96,2±8,5 |
17 | 6 | 18,5±0,5 | 16,3±1,4* | 88,2±7,1+ |
18 | 5 | 42,1±2,7 | 31,2±1,3* | 74,6±6,6+ |
Количество фагоцитарноактивных нейтрофилов в % | ||||
12 | 5 | 37,4±4,3 | 17,3±2,1* | 49,8±6,8+ |
13 | 12 | 41,9±4,7 | 39,8±3,6 | 95,9±4,5 |
14 | 6 | 49,1±2,3 | 27,2±3,7* | 50,4±4,7+ |
15 | 6 | 70,0±0,0 | 23,2±6,5* | 33,5±9,0+ |
16 | 6 | 60,5±9,3 | 43,7±7,9* | 72,0±7,6+ |
17 | 6 | 44,5±2,7 | 21,2±2,1* | 47,8±6,6+ |
18 | 5 | 52,3±2,1 | 34,7±3,7* | 66,4±4,6+ |
Примечания. * - различие со значением до замораживания p<0,05; + - различие с исходным 100% уровнем p<0,05.
|
Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах:
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 |







