I genetisk forskning og klinisk diagnostikk er nøyaktig identifisering av genetiske variasjoner avgjørende for å forstå både arvelige og somatiske sykdommer. I denne sammenhengen benyttes avanserte bioinformatiske verktøy for å oppdage og analysere germline og somatiske mutasjoner i genomiske data. Denne prosessen innebærer flere nøye koordinerte trinn, inkludert kvalitetskontroll, variantoppdagelse, og funksjonell annotasjon.

En av de første og viktigste trinnene i prosessen er kvalitetssikring (QC) av de rå sekvenseringsdataene. Kvalitetskontrollen gir en grundig oversikt over datakvaliteten, inkludert mål på base-distribusjon per syklus, innsettingsstørrelse, og kvalitet gjennom ulike sykluser av sekvensering. Dette er avgjørende for å sikre at de påfølgende analysene bygger på robuste og pålitelige data.

Når dataene er kvalitetssikret, begynner oppdagelsen av germline-varianten. Dette skjer ved å bruke verktøyet "HaplotypeCaller" fra GATK, som samtidig identifiserer enkelt-nukleotid-polymorfismer (SNPs) og indels gjennom lokal de novo sammensetning av haplotyper i aktive regioner av genomet. Etter det blir variantene vurdert ved hjelp av CNNScoreVariants, som benytter et konvolusjonelt nevralt nettverk for å vurdere kvaliteten på variantene. Filtrering av potensielle artefakter skjer deretter med "FilterVariantTranches", som benytter en maskinlæringsmodell for å eliminere falske positiver. De høy-konfidensielle variantene, som er lagret i VCF-format, blir deretter annotert ved hjelp av Funcotator, som gir innsikt i hver variants funksjonelle betydning, og kobler genomiske data med tilgjengelig biologisk informasjon og klinisk relevans.

For somatisk mutasjonsdeteksjon benyttes en konsensusmetode som kombinerer flere verktøy, inkludert muTect2, Strelka2, og Lancet. Denne tilnærmingen gjør det mulig å oppdage somatiske mutasjoner med høy presisjon, enten ved å beholde alle mutasjonene identifisert av verktøyene, eller kun de som er bekreftet av minst to verktøy for å forbedre spesifisiteten. Etter oppdagelsen gjennomgår variantene en ytterligere filtreringsprosess for å forbedre nøyaktigheten, og til slutt annoteres de med Funcotator for å gi en funksjonell kontekst.

Identifikasjon av kopitall-alterasjoner (CNA) er også en viktig del av analysen. For å oppdage slike endringer, benyttes verktøyet snp-pileup for å generere pileups fra sekvenseringsdataene. Deretter analyseres pileup-dataene med FACETS, som identifiserer og kvantifiserer CNAs, og tar hensyn til tumorens renhet og ploidy. Denne informasjonen er avgjørende for å skille ekte CNAs fra artefakter som kan skyldes heterogenitet i prøven. Det genereres en bed-fil som representerer CNAs, som deretter intersectes med en referansegenomanotasjon for å gi en fullstendig forståelse av de genetiske endringene i tumoren.

I tillegg til de tidligere nevnte metodene, er beregning av genometiske målinger som mikrosatellitt-instabilitet (MSI) også en viktig prosess. Verktøyet msisensor benyttes til å identifisere MSI-statusen ved å analysere endringer i mikrosatellitlengder. Dette er en indikator på genomisk instabilitet, som ofte observeres ved kreft. Den mutasjonelle byrden i tumorene kvantifiseres ved hjelp av spesifikke R-skript, som måler antall ikke-stille somatiske mutasjoner per megabase sekvensert. Et annet verktøy, scarHRD, benyttes til å vurdere de genomiske arr som etterlates av homolog rekombinasjonsdefisiens (HRD), noe som kan indikere tumorens historie med DNA-reparasjonssvikt.

Når det gjelder bearbeiding av RNA-data, benyttes verktøyet fastp til kvalitetskontroll, der lavkvalitetslesninger fjernes og uønskede sekvenser klippes bort. Etter kvalitetskontrollen skjer sekvensering ved hjelp av STAR, et raskt RNA-seq aligner som benytter maksimal mapper prefix (MMP) for å alignere lesninger mot referansegenomet. Dette trinnet er spesielt viktig for korrekt mapping av intron-regioner, splice-junksjoner, og chimera-aligneringer. Deretter markeres dupliserte lesninger med verktøyet "MarkDuplicates" fra GATK, som identifiserer dupliserte lesninger som stammer fra et enkelt cDNA-fragment, som ofte er et resultat av PCR-amplifikasjon.

I tillegg til de nevnte analysene er identifikasjon av genfusjoner en viktig del av RNA-seq arbeidsflyten. Verktøyet Arriba benyttes for å oppdage slike fusions med høy følsomhet og spesifisitet. Dette verktøyet analyserer alignerte lesninger og identifiserer potensielle fusionshendelser, samtidig som det filtrerer ut artefakter ved hjelp av en blacklist-fil. Arriba vurderer både split-reads og discordante mates for å sikre at ingen potensielle fusions blir oversett.

Avslutningsvis benyttes verktøyet featureCounts for å kvantifisere genuttrykk. Dette verktøyet teller antall lesninger som kartlegges til hvert gen i genomet, og gir et mål på genuttrykket, som er essensielt for å forstå den biologiske aktiviteten i cellene.

Hvordan genetisk signatur kan forutsi respons på behandling ved multiple myelom

Flere nyere studier har undersøkt hvordan genetiske signaturer kan forutsi responsen på behandling ved multiple myelom (MM), en kompleks sykdom som i stor grad er preget av intratumor heterogenitet. Denne variabiliteten i tumorenes genetiske sammensetning har vist seg å ha en betydelig innvirkning på både sykdomsutvikling og behandlingsrespons. Genetisk signaturteknologi, som involverer sekvensering og analyse av genuttrykk, har åpnet nye muligheter for presisjonsmedisin, hvor behandlingen skreddersys til hver enkelt pasients genetiske profil.

En studie av Restrepo et al. (2022) identifiserte en tre-gen signatur som kan forutsi responsen på selinexor, et legemiddel som hemmer eksport av proteiner fra cellekjernen. Dette kan bidra til å forutsi hvilke pasienter som vil ha nytte av selinexorbehandling, noe som er avgjørende i behandling av pasienter med motstandsdyktige sykdomsformer som ikke responderer på standardbehandlinger. Genetiske signaturer gir dermed et kraftig verktøy for å identifisere pasienter som er mer tilbøyelige til å dra nytte av spesifikke terapialternativer.

I tillegg har Schubert et al. (2018) utviklet en metode for å identifisere signalveier som er karakteristiske for ulike kreftformer ved å analysere genuttrykk på tvers av flere pasienter. Dette gir innsikt i de molekylære mekanismene som driver tumorvekst og behandlingsresistens, og bidrar til bedre forståelse av hvordan kreftceller utvikler seg. Ved å kombinere denne tilnærmingen med genetiske signaturer kan man ikke bare forutsi responsen på behandling, men også forstå hvorfor visse pasienter utvikler resistens mot terapier.

Når det gjelder MM spesifikt, har flere studier av Borrelo et al. (2016) og Samur et al. (2020) vist at pasienter med spesifikke genetiske profilmønstre har en dårligere prognose, mens andre har et bedre utfall. Dette understreker viktigheten av presis diagnostikk som kan skille ut pasienter med høy risiko, og dermed tillate tidlig innføring av mer aggressive behandlingsregimer.

Intratumor heterogenitet – som beskriver genetiske variasjoner mellom de ulike klonene i en svulst – har vært et tema av stor interesse. McGranahan og Swanton (2015) har påpekt at denne heterogeniteten er en av hovedfaktorene som bidrar til behandlingsresistens, og at en dypere forståelse av den genetiske variasjonen i tumorer kan føre til mer effektiv behandling. Intratumor heterogenitet kan også forklare hvorfor enkelte pasienter opplever tilbakefall etter behandlinger som initialt har vist seg å være effektive.

En viktig del av denne tilnærmingen er å forstå hvordan genetiske mutasjoner påvirker responsen på immunterapier som CAR T-cellebehandling, som har vist lovende resultater i behandlingen av MM. Munshi et al. (2021) har vist at idecabtagene vicleucel, en CAR T-cellebehandling, gir gode resultater hos pasienter med tilbakevendende og refraktær MM, og at spesifikke genetiske egenskaper kan forutsi hvem som har størst nytte av denne behandlingen. Det er også viktig å merke seg at genetiske mutasjoner som oppstår under behandlingen kan føre til tap av respons, som sett med BRAF V600E-mutasjoner etter CAR-T behandling, et fenomen som kan reduseres ved målrettet terapi som involverer MAPK-hindring (Elnaggar et al., 2022).

En annen lovende utvikling er bruken av venetoklaks, et stoff som har vist effekt på pasienter med tilbakefallende MM som har B-cell gene expression. Gupta et al. (2021) fant at pasienter med visse genetiske signaturer har en mer positiv respons på venetoklaksbehandling, noe som understreker viktigheten av genetiske analyser for å forutsi behandlingssuksess.

Genetiske analyser spiller også en sentral rolle i kartleggingen av risiko og tidlig påvisning av sykdom. Landgren et al. (2009) fant at slektninger til pasienter med monoclonal gammopathy of undetermined significance (MGUS) har økt risiko for å utvikle plasma cell sykdommer som multiple myelom. Dette kan åpne for genetisk overvåking av høyrisikogrupper og muligens tidlig intervensjon før sykdommen utvikler seg til fullblods myelom.

I sum peker alle disse studiene på den sentrale rollen som genetiske signaturer spiller i både diagnostikk, risikostratifisering og behandling av multiple myelom. Genetiske tester og molekylære analyser gir helsepersonell en bedre forståelse av sykdommens natur og utvikling, og gjør det mulig å tilpasse behandlingen til den enkelte pasients behov. Dette er et steg nærmere mer effektiv, skreddersydd behandling, og åpner for nye muligheter i kampen mot denne komplekse sykdommen.

Det er viktig å forstå at denne genetiske tilnærmingen ikke bare er begrenset til diagnostikk og valg av behandling, men også har en betydning for hvordan vi overvåker pasienters respons på behandling over tid. Ved å kontinuerlig overvåke genetiske endringer og mutasjoner som oppstår under behandling, kan det være mulig å forutsi tilbakefall eller utvikling av resistens, og dermed justere behandlingen før sykdommen får fotfeste igjen. Dette er spesielt viktig for pasienter som har gjennomgått flere behandlingsrunder og for dem som er refraktære mot standardbehandlinger.

Hvordan sikre nøyaktighet og effektivitet i HPV-testing ved kliniske studier?

Effektiv HPV-testing i kliniske omgivelser krever en nøye koordinert prosess der hver enkelt operasjonell fase må kontrolleres for kvalitet for å unngå forsinkelser. Instrumentene som benyttes, er utviklet for å kunne kjøre flere analyser samtidig, der hver test kan settes inn uavhengig av de andre. I vårt tilfelle brukte vi et fire-moduls instrument som kunne utføre fire analyser parallelt. Denne konfigurasjonen passet godt med volumet og flyten ved vårt kliniske senter, da det sjelden ble gjennomført mer enn fire undersøkelser i timen. Hver fase av prosessen ble nøye overvåket for å identifisere og eliminere potensielle problemer.

For å samle cervikale prøver kreves et spesifikt utvalg av materialer, inkludert gynekologisk undersøkelsesbenk, engangshansker, vaginalt spekulum og cytobrush. Ved HPV-testing er det også nødvendig med PreservCyt-vialer, Xpert HPV-kassetter, pipetter og GeneXpert-instrumentet. Disse komponentene må håndteres med presisjon for å sikre prøvens integritet og testens pålitelighet.

Studien vi gjennomførte i Cape Town, Sør-Afrika, omhandlet 1160 kvinner i alderen 30 til 65 år, hvor omtrent halvparten var HIV-positive og halvparten HIV-negative, for å muliggjøre stratifiserte analyser basert på HIV-status. Deltakerne ble rekruttert fra to ulike populasjoner: en screeninggruppe som representerte et primærhelsetilbud, og en henvisningsgruppe ved en kolposkopiklinikk, der kvinner med unormale cytologiske funn ble videre undersøkt. Denne differensieringen var nødvendig for å både kartlegge HPV-prevalens og sikre tilstrekkelig antall tilfeller med forstadier til livmorhalskreft (CIN2+) for pålitelig sensitivitetsevaluering.

Inklusjonskriteriene var strenge: ingen tidligere anogenital kreft, ingen tidligere behandling for cervikal dysplasi, ingen hysterektomi og ingen graviditet. For å unngå bekreftelsesbias ble alle kvinner underlagt kolposkopi med biopsier ved synlige lesjoner eller endocervikal curettage ved fravær av synlige funn. Ved behov ble loop elektrokirurgisk eksisjon (LEEP) utført, som både er en behandling og gir vevsprøver for histologisk analyse.

For prøvetaking ble det benyttet en teknikk med en plastspatula og en endocervikal cytobrush som samlet celler fra livmorhalsen. Disse ble umiddelbart plassert i separate vialer med PreservCyt-løsning og grundig blandet for å sikre representativ prøve. En standardisert protokoll for pipettering av 1 ml prøve til Xpert HPV-kassetten ble fulgt nøye. Testing ble utført på stedet i primærhelsetjenesten av helsearbeidere uten laboratorieerfaring, noe som demonstrerer teknologiens brukervennlighet og mulighet for desentralisert diagnostikk.

For kvinner rekruttert ved kolposkopiklinikken ble prøvene transportert neste dag til samme maskin for analyse, og resultatene ble rapportert til deltakerne så raskt som mulig. Prosessen sikrer rask tilbakemelding og muliggjør tidlig intervensjon.

Kvaliteten på patologisk diagnose ble ivaretatt gjennom en flertrinns vurderingsprosess, inkludert lokal evaluering, ekstern revidering ved Columbia University, og en uavhengig tredjepatolog som avgjorde ved uenighet. Dette garanterer at studiens endepunkt – påvisning av CIN2+ – er så presist som mulig, og minimerer skjevheter i sensitivitet og spesifisitetsanalyser.

Betydningen av denne metodiske tilnærmingen ligger ikke bare i påliteligheten av testresultatene, men også i evnen til å tilpasse screeningstrategier til lokale kliniske forhold og befolkningssammensetninger. Det understrekes at selv små endringer i prøvetakings- og testprosedyrer kan ha store konsekvenser for nøyaktigheten og tilgjengeligheten av screening i ressursbegrensede omgivelser.

Det er vesentlig å forstå at et balansert fokus på både sensitivitet og spesifisitet i HPV-testing er avgjørende for å optimalisere screeningprogrammer, særlig i en «screen-and-treat»-strategi. Overdreven sensitivitet kan føre til unødvendige behandlinger, mens for lav sensitivitet risikerer å overse sykdomstilfeller. Derfor må utvelgelsen av testparametre og tolkning av resultater alltid ta høyde for den kliniske konteksten og pasientpopulasjonens særegenheter.

Endelig må det understrekes at implementering av HPV-testing på slike måter krever grundig opplæring av helsepersonell, tilpasning til lokale ressurser og logistikk, og en kontinuerlig kvalitetskontroll for å sikre at alle ledd i prosessen fra prøvetaking til rapportering fungerer optimalt. Bare da kan screeningprogrammer bidra effektivt til å redusere forekomsten av livmorhalskreft globalt.

Hvordan moderne teknologier for diagnostisering og behandling forvandler presisjonsmedisin

Presisjonsmedisin har blitt en hjørnestein i kreftbehandling, og dagens fremskritt innen molekylærbiologi, datavitenskap og teknologi har revolusjonert måten vi diagnostiserer og behandler sykdommer på. Spesielt har genomisk klassifisering og AI-baserte verktøy åpnet nye muligheter for mer målrettet terapi, som er mer tilpasset den individuelle pasientens genetiske profil.

Genomisk klassifisering, som inkluderer subtypene for B-ALL (akutt lymfoblastisk leukemi) og AML (akutt myelogen leukemi), har vært et viktig steg i å forstå kreftens kompleksitet. Klassifiseringen gjør det mulig å identifisere spesifikke genetiske endringer som er karakteristiske for ulike former for leukemi og lymphoma, og gir et bedre grunnlag for skreddersydde behandlinger. Denne tilnærmingen krever avansert teknologisk utstyr som sekvenseringsteknikker og spesialiserte datamaskiner som kan analysere enorme mengder biologiske data for å finne de subtile forskjellene mellom tumorstammene.

En annen betydelig utvikling innen presisjonsmedisin er bruken av RNA-ekstraksjon og sekvenseringsteknikker for å analysere tumorer på molekylært nivå. Dette gjør det mulig å få innsikt i kreftcellens dynamikk og oppdage tidlige tegn på resistens mot behandlingen. Korrekt prøvetaking og lagring er avgjørende for å sikre at dataene som samles inn er nøyaktige og representative for pasientens tilstand. Nyere teknologier som nanopore-sekvensering åpner for raskere og mer presis analyse av genetiske prøver, noe som kan endre fremtidens diagnostiske prosesser.

Datavitenskap spiller også en stadig viktigere rolle i behandlingen av kreft, hvor verktøy som maskinlæring og kunstig intelligens (AI) hjelper leger å analysere pasientdata på en raskere og mer presis måte. Bruken av AI i personlig tilpassede behandlingsplaner har vist seg å være lovende, da disse systemene kan finne mønstre i enorme datasett som ellers ville vært umulige å oppdage for mennesker. Den store fordelen med AI i dette feltet er at det kan ta hensyn til et bredt spekter av faktorer, fra genetiske data til miljømessige påvirkninger, og dermed gi en mer helhetlig tilnærming til pasientens behandling.

I tillegg er det nå et større fokus på å forstå tumorer ikke bare som en enkeltstående enhet, men som en sammensatt og dynamisk prosess med flere undergrupper. Ved å analysere intra-tumor heterogenitet kan forskere bedre forutsi hvordan tumorer vil utvikle seg og hvorfor visse behandlinger fungerer for noen pasienter, men ikke for andre. Dette har ført til utvikling av mer spesifikke, subtypemålte behandlinger som er designet for å angripe de individuelle karakteristikkene til hver pasient.

En annen viktig innovasjon innen diagnostikk er bruken av forskjellige bildeteknikker, som refleksjons-konfokal mikroskopi og optisk kohærens-tomografi (OCT). Disse metodene har blitt integrert i kliniske praksiser for å gi mer detaljerte og mindre invasive bilder av hudlesjoner og andre tumorer. De gir mulighet for rask vurdering på stedet, noe som er en stor fordel under kirurgiske inngrep, da legene kan se tumorens nøyaktige utstrekning i sanntid og tilpasse behandlingen deretter.

Utviklingen av mobile teknologier, som smarttelefonbaserte applikasjoner og bærbare biosensorer, representerer en annen lovende retning for fremtiden. Disse verktøyene kan potensielt gjøre det mulig for pasienter å overvåke sine egne helseforhold og få tilgang til diagnostiske verktøy hjemmefra. Dette kan i sin tur gjøre det lettere å fange opp tidlige tegn på sykdom, forbedre oppfølgingen og redusere ventetider for behandling.

Til tross for disse bemerkelsesverdige fremskrittene er det fortsatt flere utfordringer som må adresseres. Kostnader og tilgjengelighet av avansert diagnostisk utstyr kan være en hindring for utbredt bruk, spesielt i lav- og mellominntektsland. I tillegg krever de enorme datamengdene som genereres i presisjonsmedisin, kraftig databehandlingsinfrastruktur og streng regulering av personvern og datasikkerhet. Ettersom vi beveger oss mot en fremtid hvor genetiske data er en integrert del av medisin, blir det også viktig å utvikle etiske retningslinjer for hvordan denne informasjonen skal brukes og deles.

For å oppsummere, fremtidens medisin er sterkt forankret i vitenskapens fremskritt og teknologiske innovasjoner. Målet er å tilby en behandling som er så spesifikk som mulig for den enkelte pasient, basert på deres genetiske, molekylære og fysiologiske egenskaper. For å oppnå dette er det nødvendig å kombinere avanserte teknologier som AI, genomisk sekvensering, bildediagnostikk og personlig tilpassede terapier, og samtidig overvinne de etiske, teknologiske og økonomiske barrierene som fortsatt finnes.

Hvordan FIBI kan revolusjonere diagnostikk i lavressursland

I mange lavressursland (LRC), særlig i Afrika, er kreftforekomsten på vei opp, hovedsakelig drevet av økt levealder. Kreftdødsraten i disse landene overstiger allerede de i USA. Mangelen på diagnostiske tjenester og patologer, kombinert med utfordringer med tidlig diagnose, bidrar i stor grad til den negative påvirkningen av sykdommen. I slike regioner med begrenset helseinfrastruktur, kan FIBI-teknologi (fluorescens-basert bildediagnostikk) være et kraftig verktøy for å fylle behovet for standard histopatologiske tjenester, spesielt på grunn av dens lave kostnader og bærbarhet. Fordi bildene genereres direkte på digitale plattformer, kan de lett deles med patologer verden over for fjernfortolkning, noe som er avgjørende ettersom mange LRC lider av patologmangel.

En viktig utfordring for FIBI er at den benytter en mikroskopisk metode som kan være mer tidkrevende enn tradisjonell histologi, spesielt når det gjelder større prøver som for eksempel hele organer. Men for små vevsprøver, som biopsier, tar det bare noen få minutter å skanne, noe som gir raske resultater. Samtidig har ferskt vev en lavere autofluorescens enn fikserte prøver, noe som kan påvirke både skannehastigheten og bildeintegriteten. For større prøver vil fremtidige forbedringer i FIBI-teknologien kunne inkludere høyere LED-intensitet, raskere kameraer og mer effektive komponenter for å møte disse utfordringene.

En annen utfordring er at ferskt vev, sammenlignet med fikserte prøver, har lavere evne til nukleærfarging, ettersom cellemembranene er mindre permeable. Dette kan håndteres ved å forlenge fargingsprosessen, men mer forskning er nødvendig for å finne de optimale tidene og for å forstå hvordan ulike vevstyper reagerer på denne metoden. Langvarig eller gjentatt eksponering for FIBI-lys kan også føre til at fargen blekner, men dette er vanligvis ikke et problem ved automatiserte skanninger. Dersom nødvendig, kan en rask nyfarging gjenopprette kontrasten.

I tillegg til de tekniske utfordringene med selve bildefangsten, er det en praktisk utfordring å integrere FIBI-teknologi i eksisterende arbeidsflyter hos patologene. Dette innebærer spørsmål som når og hvor bildene skal tas, hvem som skal lese og analysere bildene, og hvordan kostnader og refusjoner skal håndteres. Å få dette til å fungere i lavressursland vil kreve både teknologiske og organisatoriske tilpasninger.

Når vi ser på de potensielle fremtidige bruksområdene for FIBI, er det viktig å merke seg at teknologiens utvikling fortsatt er i sin spede begynnelse. Selv om tidlige valideringsstudier har vist lovende resultater, er det fortsatt mye som kan forbedres. For eksempel, i de fremtidige versjonene av FIBI vil det trolig være raskere skanning, høyere bildekvalitet og mer effektive metoder for vevsforberedelse, inkludert alternative fargestoffer for å redusere fotobleking.

FIBI er spesielt lovende fordi den benytter hematoxylin og eosin (H&E) som fargestoffer, som er godt kjent for patologer og histoteknikere. Dette gjør det lettere å integrere i eksisterende diagnostiske systemer. Likevel pågår det forskning på alternative fargestoffer og metoder for å forbedre både bildekvaliteten og redusere uheldige effekter som fotobleking. Det er også fokus på å utvikle raske fikseringsmetoder, inkludert kjemiske fikseringsmidler og mikrobølgebehandling, som kan hjelpe til med å bevare vevets struktur og gjøre bildene mer pålitelige.

En annen lovende utvikling er muligheten til å bruke FIBI til rask immunfarging, som kan gi nyttige molekylære profiler for rask diagnostikk på stedet. Dette vil være spesielt verdifullt i områder med begrenset tilgang til avanserte laboratorier.

En utfordring som fortsatt gjenstår, er at FIBI-bildene kan være mer komplekse enn tradisjonelle H&E-bilder, og kan være vanskeligere for både mennesker og datamaskiner å tolke. Dette kan løses ved å utvikle programvare som kan bearbeide FIBI-bilder for å gjøre dem mer sammenlignbare med H&E-bilder, noe som vil lette integreringen i eksisterende diagnostiske plattformer og øke teknologiens anvendelighet.

FIBI-teknologi har et stort potensial for å forbedre diagnostikk og forskning, spesielt i lavressursland hvor tilgang til moderne medisinske tjenester er begrenset. Ved å tilby en billigere, raskere og mer tilgjengelig løsning for vevsundersøkelser, kan FIBI bidra til å redusere forskjellene i helsetjenestetilgang mellom utviklede og utviklingsland. Fremtidige forbedringer vil øke teknologien ytterligere og bidra til bedre og raskere diagnostikk, noe som kan redde liv på global skala.