I analytisk kemi er det essentielt at forstå både den kvalitative og kvantitative analyse af en prøve. Den kvalitative analyse beskæftiger sig med at identificere analytten, som kan være atomer, molekyler eller funktionelle grupper. Denne analyse indikerer tilstedeværelsen af analytten i en given matrix. Den kvantitative analyse derimod handler om at måle mængden eller koncentrationen af analytten i prøven og er ofte relateret til koncentrationen af analytten i matrixen, selvom den også kan vedrøre andre fysiske, kemiske eller biologiske egenskaber.

En af de vigtigste forberedelsesmetoder er tørring af prøven, især når prøverne oprindeligt er våde. Tørring er ikke kun en nødvendighed, men et krav for at sikre præcise målinger af analyttens indhold i prøven. Dette er især vigtigt i tilfælde, hvor den næste analysefase kræver en tør prøve, eller når der skal opnås en prøve med en konstant vægt, som kan relateres direkte til analyttens koncentration. Tørring kan også være påkrævet for kemiske reagenser, såsom hygroskopiske salte, som skal tørres før vejning. Fejl i tørring, som for eksempel at udsætte en prøve for uhensigtsmæssige betingelser, kan føre til tab af måltelementer eller endda en kemisk transformation af prøven. For at beregne fugtindholdet i en prøve kan man benytte en simpel formel, hvor man måler massen af prøven før og efter tørring.

Når prøverne er forberedt, kan det være nødvendigt at bruge opløsning, fordøjelse eller ekstraktion afhængigt af matrixens type og den ønskede analysemetode. Dissolution og fordøjelse omfatter løsningen af prøven i et passende opløsningsmiddel, hvilket kan være nødvendigt for at analysere faste prøver eller komplekse væsker. Ekstraktion bruges ofte til at isolere analytten fra matrixen, hvilket kan være en kombination af flere metoder. Det er vigtigt at forstå, at enhver ændring i koncentrationen af analytten under disse processer skal tages i betragtning i de efterfølgende beregninger. De nødvendige beregninger kan forenkles betydeligt, hvis man grafisk skildrer de forskellige trin i analysen og anvender de korrekte enheder til at evaluere koncentrationen.

En af de mest udfordrende aspekter af kvantitativ analyse er at sikre, at enhederne i beregningerne er korrekt håndteret. Ved at bruge de rette matematiske procedurer kan man sikre, at enhederne enten annulleres ud korrekt eller føres videre til den ønskede form. Derfor er det altafgørende at arbejde med præcise enheder og altid kontrollere, at de matematiske operationer stemmer overens med de oprindelige enheder. For eksempel, når man arbejder med fortynding, kan forholdet mellem volumen og koncentration ofte forenkles ved hjælp af en enkel ligning: C1 * V1 = C2 * V2, hvor C1 og V1 er koncentrationen og volumen af den oprindelige opløsning, og C2 og V2 er koncentrationen og volumen af den fortyndede opløsning.

En yderligere udfordring i kvantitativ analyse er, når den instrumentelle respons ligger uden for kalibreringsområdet. I sådanne tilfælde skal testportionen enten fortyndes eller koncentreres for at få en måling, der ligger inden for det kalibrerede område. Dette gøres ved hjælp af fortyndings- og koncentrationsfaktorer. Fortyndingsfaktoren (DF) er forholdet mellem den endelige volumen af løsningen og den oprindelige testportion, mens koncentrationsfaktoren (CF) beregnes på samme måde.

Uanset hvilke metoder der anvendes i præpareringen af prøven, er det afgørende at kunne vurdere, hvordan hver fase af behandlingen påvirker analysens resultater. For at opnå præcise målinger skal analysatoren være i stand til at skelne, om en behandling fører til en fortynding eller koncentration af analytten. Det kræver nøjagtige målinger og forståelse af, hvordan de enkelte faser af analysen påvirker den oprindelige prøve.

Det er også vigtigt at understrege, at selvom de tekniske aspekter af analytisk kemi kan virke komplekse, kan mange af dem forenkles betydeligt, hvis man følger de grundlæggende principper og har en systematisk tilgang til beregningerne. At mestre disse teknikker kræver både teori og praktisk erfaring, hvilket gør det muligt at opnå pålidelige og reproducerbare resultater.

Hvordan kan man bestemme strukturen af forbindelser gennem IR-spektroskopi?

I analysearbejde med IR-spektroskopi er det vigtigt at forstå, hvordan forskellige molekylers strukturer kan identificeres ud fra deres spektre. Når man står overfor et uidentificeret molekyle, kan midt-IR spektroskopi give værdifuld information, der hjælper med at bestemme molekylets funktionelle grupper og den overordnede struktur. For at gøre dette, kræves en systematisk tilgang til at analysere de forskellige absorptionsbånd i spektret. Det kan være meget nyttigt at være opmærksom på typiske bånd og deres placeringer, hvilket kan pege på specifikke grupper i molekylet.

For eksempel, i tilfælde hvor et molekyle, der består af C6H14O, udvises i et IR-spektrogram, vil et typisk bånd for et ether-substitueret molekyle vise sig i spektrene. Dette kan indikere en struktur som CH3(CH2)3–O–CH2CH3, hvor den karakteristiske ethergruppe er til stede. Et andet eksempel kunne være et molekyle med en masse på 100, som viser et spektrum, der er kompatibelt med en struktur som CH2=CH–O–(CH2)3CH3. Her er den terminale dobbeltbinding (C=C) en vigtig ledetråd, da den altid bør overvejes i terminalpositionen.

Der er også situationer, hvor vi støder på komplekse forbindelser som benzen eller methylbenzen, hvor spektrene kan være sværere at tolke, især når der er flere substitutionsmønstre. For eksempel, når et molekyle som 1,2,4-trimethylbenzen præsenteres, kan spektret afsløre mange små subtile forskelle i båndpositioner, som kræver en grundig analyse for at bestemme, at tri-substitution er den korrekte struktur.

Når man arbejder med aromatiske forbindelser, kan spektrene være vanskeligere at fortolke, især når substituenterne er usædvanlige eller uventede. For eksempel kan en forbindelse med en molar masse på 108 og en struktur som Ph–CH2OH (benzylalkohol) vise et karakteristisk spektrum, der viser både OH- og benzenringens vibrationer. Dette kan være nyttigt til at bestemme strukturen korrekt, selvom visse bånd måske virker overraskende for en første øjensyn.

En anden interessant udfordring opstår, når et molekyle indeholder både carbon, hydrogen og oxygen, men har en højere molar masse. I sådanne tilfælde, som når man ser på en forbindelse med masse 134, vil man typisk bemærke et bånd omkring 700-750 cm−1, hvilket er kendetegnende for aromatisk monosubstitution. Dette kan hurtigt afsløre, at forbindelsen har en struktur som Ph–CO–CH3 (phenylacetat), som er en meget stabil forbindelse i væsker.

Det er afgørende at forstå, at IR-spektroskopi ikke kun hjælper med at identificere funktionelle grupper, men også med at forstå de strukturelle elementer, der kan være skjult bag et spektrum. Et eksempel er en forbindelse som Ph–CH2CH2OH, som findes i mange æteriske olier. Dette spektrum afslører en strukturel sammensætning, der er typisk for forbindelser af æterisk olie-type, hvilket kan være nyttigt i både kosmetisk og farmaceutisk industri.

I tilfælde af forbindelser, der indeholder nitrogen, som Ph–CN, er det vigtigt at bemærke de særlige bånd i spektret, der kan relateres til cyanogruppen, som ofte findes i organiske forbindelser. Det er også nyttigt at forstå, hvordan interferens fra andre grupper kan forstyrre spektrale signaler. For eksempel kan et molekyle som CH3–Ph–CN i visse tilfælde føre til spektrale mønstre, der kan fortolkes forkert, medmindre de karakteristiske bånd for cyanogruppen tages i betragtning.

Endelig skal vi huske, at selvom IR-spektroskopi er et kraftfuldt redskab, er det ikke altid den eneste metode, der kræves for at identificere en struktur. Ofte kombineres IR-spektroskopi med andre teknikker som NMR (nukleær magnetisk resonans) eller MS (masse spektrometri) for at få en mere præcis og komplet struktur. Derfor er det vigtigt at bruge en tværfaglig tilgang, når man arbejder med komplekse prøver.

Hvordan man bekræfter og kvantificerer analytten i kromatografisk analyse

For at bekræfte tilstedeværelsen af en analytt i en prøve er det nødvendigt at sikre, at retentionstiden for analytten og den interne standard (IS) svarer til den, der er opnået for en standardopløsning. I overensstemmelse med Europa-Kommissionens beslutning 2002/657/EC tillades en tolerance på ±0,5 % for gaschromatografi (GC) og ±2,5 % for væskekromatografi (LC). Det er en grundlæggende regel at analysere prøver under forhold, der muliggør en nøjagtig adskillelse af analytten. Hvis retentionstiden for analyttens peak i prøven er den samme som for standarden under de samme kromatografiske forhold, kan tilstedeværelsen af analytten bekræftes.

En anvendt metode for at bekræfte en positiv identifikation af analytten er at tilsætte en kendt mængde af en standard af analytten til prøven. Hvis den resulterende kromatogram viser et større peak, kan analytten fra standarden være til stede i prøven. Det er vigtigt, at den forstørrede peakarea (eller højde) svarer til den tilførte mængde standard. Hvis et nyt peak, en skulder eller hale opstår i det eksisterende peak, indikerer det, at analytten ikke var til stede i prøven. Ifølge Europa-Kommissionens beslutning 2002/657/EC må forskellen før og efter tilsætning af standarden ikke være større end 10 % i peakbredden på halvhøjden og 5 % i retentionstid.

I nogle tilfælde kan nærværet af en forbindelse bekræftes ved brug af kemisk derivatisering. Hvis det derivatiserede produkt kan adskilles i prøven, vil forsvinden af det oprindelige peak og fremkomsten af et derivatiseret peak udgøre en sekundær metode til at bekræfte tilstedeværelsen af analytten. Dog er det vigtigt at forstå, at positive konklusioner ikke kan betragtes som 100 % definitive, mens negative konklusioner (ingen match) er definitive.

Når avancerede detektorer som diodarray-detektorer (DAD) eller massespektrometre anvendes, sammenlignes de spektre, der måles for peakene i prøven, med et spektralt bibliotek. Algoritmer kan også anvendes til at vurdere peakets renhed, især når DAD anvendes, hvilket hjælper med at fastslå, om peaket stammer fra én eller flere forbindelser.

Når det kommer til kvantitativ analyse, bør dette kun udføres, når en positiv identifikation af analytten er opnået. Den første fase involverer integration af de identificerede peaks. Selvom peakintegration normalt udføres automatisk af kromatografisk software, kan peakområdet også integreres manuelt ved at tegne en baseline fra starten af peaket til dets slutning. Peakets højde måles fra toppen til baselinen. Det er væsentligt, at den samme integrationsmetode bruges for både standarder og prøver, selvom dette ikke altid er muligt, da prøver, der gennemgår flerstadiebehandling, kan have en støjende baseline, skulder eller hale, der gør peakene mere komplekse at analysere.

Når kvantificeringen udføres, sammenlignes det integrerede område eller højde af prøvens peak med de standarder, der er under de samme kromatografiske forhold. Dette kræver opbygning af en kalibreringskurve, der bruger standardopløsninger med forskellige koncentrationer af analytten. Der opnås en empirisk relation mellem peakområdet (eller højde) og koncentrationen. En kalibreringskurve er nødvendig for hver analytt, og kvantifikationsprocessen bliver meget arbejdskrævende, når mange forbindelser (f.eks. 40-50) skal adskilles.

Der findes to hovedtyper af kalibrering til kvantitativ analyse i kromatografi: ekstern kalibrering og intern kalibrering. Den eksterne kalibrering refererer til den klassiske kalibreringsmetode, hvor standardopløsninger bruges, mens den interne kalibrering involverer tilsætning af en intern standard (IS) til både prøver og standardopløsninger. Denne metode korrigerer for variationer i signalet forårsaget af prøvebehandling eller kromatografiprocessen. En af de største udfordringer ved intern kalibrering er at finde en IS, der opfylder de ideelle krav: retentionstiden skal være tæt på analyttens, men godt adskilt fra andre komponenter i prøven, og det bør ikke være til stede i prøven. Ved GC eller LC, der er koblet med massespektrometri, kan IS være et isotopisk mærket analytt, hvilket gør det muligt at adskille IS fra analytten baseret på massen.

Intern kalibrering indebærer, at en kendt mængde IS tilføjes til både standardopløsninger og prøver. For at kalibrere opbygges en graf, der viser forholdet mellem analyttens peakareal (eller højde) og IS-peakarealet. Da den samme mængde IS er tilføjet til de ukendte prøver, kan analyttens mængde nemt beregnes.

Normering er ikke en almindeligt anvendt procedure, men det kan anvendes, når det antages, at detektoren reagerer ens for en gruppe af forbindelser, som for eksempel ved kvantificering af en række homologer, der har små forskelle i en alkylkæde. I sådanne tilfælde kvantificeres hvert peak baseret på procentdelen af peakområdet i forhold til summen af områderne af alle peaks.

Når man arbejder med multistadieprøvebehandling kombineret med kromatografiske metoder, er det vigtigt at forstå, at den koncentration af analytten, der beregnes ud fra kalibreringsfunktionen, ikke nødvendigvis er den endelige koncentration. Hver prøve kan have forskellige forbehandlingsprocesser, som kan introducere variationer i prøvens sammensætning og dermed påvirke det samlede resultat. Det er afgørende at tage højde for disse forskelle under både analyse og fortolkning af dataene.

Hvordan balancerer man redox-reaktioner i syre- og baseopløsninger?

Redoxreaktioner er fundamentale processer i kemi, som involverer overførsel af elektroner mellem stoffer. Dette kan ske under forskellige betingelser, herunder både sure og basiske opløsninger, hvilket kræver præcise metoder til at balancere reaktionerne korrekt. En af de mest anvendte metoder er halvreaktionsmetoden, hvor man opdeler en redoxreaktion i to halvreaktioner - en for oxidation og en for reduktion - og balancerer dem individuelt for masse og ladning.

Et eksempel på en redoxreaktion, der finder sted i en sur opløsning, er oxidation af ethanol (CH₃CH₂OH) af kaliumpermanganat (KMnO₄) i svovlsyre. Denne reaktion danner eddikesyre (CH₃COOH), kaliumsulfat (K₂SO₄), mangan(II) sulfat (MnSO₄) og vand (H₂O). Ved at anvende halvreaktionsmetoden opnås de følgende balanserede ioniske og molekylære ligninger:

Halvreaktioner:

  • Oxidation:

    CH3CH2OH+H2OCH3COOH+4H++4eCH₃CH₂OH + H₂O \rightarrow CH₃COOH + 4H^+ + 4e^-

  • Reduktion:
    MnO4+8H++5eMn2++4H2OMnO₄^- + 8H^+ + 5e^- \rightarrow Mn^{2+} + 4H₂O

For at opnå den samlede balanserede reaktion, skal vi sørge for, at antallet af elektroner, der tabes i oxidation, svarer til antallet af elektroner, der optages i reduktion. Når vi gør dette, får vi:

Balanseret ionisk reaktion:

5CH3CH2OH+4MnO4+12H+5CH3COOH+4Mn2++11H2O5CH₃CH₂OH + 4MnO₄^- + 12H^+ \rightarrow 5CH₃COOH + 4Mn^{2+} + 11H₂O

Den molekylære reaktion ser således ud:
5CH3CH2OH+4KMnO4+6H2SO45CH3COOH+2K2SO4+4MnSO4+11H2O5CH₃CH₂OH + 4KMnO₄ + 6H₂SO₄ \rightarrow 5CH₃COOH + 2K₂SO₄ + 4MnSO₄ + 11H₂O

I den næste reaktion, der sker i en sur opløsning med natriumiodid (NaI) og svovlsyre (H₂SO₄), oxideres iodidioner (I⁻) til jod (I₂), samtidig med at svovlsyren reduceres til hydrogensulfid (H₂S). Her er de balanserede halvreaktioner:

Halvreaktioner:

  • Oxidation:

    2II2+2e2I^- \rightarrow I₂ + 2e^-

  • Reduktion:
    H2SO4+10H++8eH2S+4H2OH₂SO₄ + 10H^+ + 8e^- \rightarrow H₂S + 4H₂O

Balanseret ionisk reaktion:

H2SO4+10H++8IH2S+4I2+4H2OH₂SO₄ + 10H^+ + 8I^- \rightarrow H₂S + 4I₂ + 4H₂O

Når vi arbejder med basiske opløsninger, som i tilfælde af aluminium (Al) i en natriumnitratopløsning (NaNO₃), ændrer reaktionsforløbet sig lidt. I denne reaktion oxidizes aluminium til et kompleks, [Al(OH)₄]⁻, mens nitrationer (NO₃⁻) reduceres til ammoniak (NH₃).

Halvreaktioner:

  • Oxidation:
    Al+4H2O[Al(OH)4]+4H++3eAl + 4H₂O \rightarrow [Al(OH)₄]^- + 4H^+ + 3e^-

  • Reduktion:

    NO3+9H++8eNH3+3H2ONO₃^- + 9H^+ + 8e^- \rightarrow NH₃ + 3H₂O

Balanseret ionisk reaktion:
8Al+3NO3+23H2O+27H+8[Al(OH)4]+3NH3+9H2O8Al + 3NO₃^- + 23H₂O + 27H^+ \rightarrow 8[Al(OH)₄]^- + 3NH₃ + 9H₂O

En vigtig del af at forstå disse reaktioner er at analysere spontane reaktioner. For eksempel, hvis en stribe tin (Sn) nedsænkes i en opløsning af zinkioner (Zn²⁺), vil en spontan reaktion finde sted, hvis elektroderne har en passende forskel i deres elektrodepotentialer. Hvis den elektrokemiske celle har en positiv potentialforskel, vil reaktionen være spontan.

Eksempel på spontane reaktioner:
For at afgøre om en reaktion er spontan, kan vi anvende den elektriske spænding E0E_0 for de involverede elektroder. Hvis den samlede cellepotentiale er positiv, vil reaktionen være spontan, og dette gælder også for galvaniske celler, der genererer elektrisk energi uden ekstern strømforsyning. Eksempelvis i en celle med jern og krom:

Halvreaktioner:

  • Cathode (reduktion):

    Fe3++eFe2+Fe^{3+} + e^- \rightarrow Fe^{2+}

  • Anode (oxidation):
    CrCr3++3eCr \rightarrow Cr^{3+} + 3e^-

Samlet reaktion:

Cr+3Fe3+Cr3++3Fe2+Cr + 3Fe^{3+} \rightarrow Cr^{3+} + 3Fe^{2+}

Cellepotentialet E0E_0 beregnes som:

E0(celle)=E0(cathode)E0(anode)=0.771V(0.744V)=1.515VE_0 \text{(celle)} = E_0 \text{(cathode)} - E_0 \text{(anode)} = 0.771V - (-0.744V) = 1.515V

Da cellen har et positivt E0E_0, vil reaktionen være spontan, og cellen er derfor en galvanisk celle.

Ved elektroplatering af guld fra en opløsning af Au³⁺, hvor en strøm på 2 A anvendes, kan vi beregne den tid, der kræves for at deponere en given mængde guld. Den elektrokemiske reaktion er som følger:

Halvreaktion:

Au3++3eAuAu^{3+} + 3e^- \rightarrow Au

For at finde den nødvendige tid, beregner vi antallet af mol Au, der skal deponeres, og bruger Faradays lov for at finde ud af, hvor længe strømmen skal påføres.

Faradays lov:
t=mMInFt = \frac{m \cdot M}{I \cdot n \cdot F}

Hvor:

  • mm er massen af det deponerede stof,

  • MM er molmassen af guld,

  • II er strømstyrken,

  • nn er antallet af elektroner per ion, og

  • FF er Faradays konstant.

Ved at indsætte værdierne kan vi bestemme den tid, der kræves.


For at forstå disse reaktioner på et dybere niveau, er det vigtigt at have en god forståelse af elektrokemiske celler og deres principper, især hvordan man udregner cellepotentialer og hvordan de relaterer sig til spontane reaktioner. Det er også afgørende at forstå, hvordan forskellige opløsningers pH påvirker både oxidation og reduktion, da pH kan ændre både reaktionernes hastighed og retning.