Дезинфекция и стерилизация (стр. 4 )

Стерилизация

Основные понятия и термины

Стерилизация — полное освобождение объектов внешней среды от вегетативных и покоящихся форм микроорганизмов путём использования физических или химических факторов. Стерилизация проводится с целью:
1) предупреждения заноса микроорганизмов в организм человека при медицинских вмешательствах; 2) исключения микробной контаминации лекарственных и диагностических материалов, питательных сред и культур клеток, используемых при микробиологических и иммунологических исследованиях.

Комплекс лечебно-профилактических мероприятий, направленных на уничтожение микроорганизмов в ране либо в другом патологическом образовании или в организме в целом, называется антисептикой, а направленных на предупреждение внедрения возбудителей инфекции в рану, ткани, органы, полости тела больного при любых медицинских (диагностических в том числе) манипуляциях — асептикой.

Этапы стерилизации

Стерилизация изделий медицинского назначения осуществляется в три этапа: дезинфекция; предстерилизационная очистка и собственно стерилизация.

Дезинфекцию изделий медицинского назначения проводят с целью уничтожения патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, в том числе возбудителей вирусных гепатитов и ВИЧ-инфекции, микобактерий туберкулёза, грибов, включая род кандида. Дезинфекции подлежат все изделия после применения их у пациентов.

Дезинфекцию изделий осуществляют физическим и химическим методами. Выбор метода зависит от особенностей изделий, материалов, используемых для их производства, а также от их назначения.

Физический метод включает кипячение, воздействие водяного насыщенного пара или сухого горячего воздуха.

Кипячение инструментов проводят в дистиллированной воде в течение 30 мин с момента её закипания или в воде с 2 %-ным раствором питьевой соды (натрия двууглекислого) в течение 15 мин с момента закипания. Данному виду дезинфекции подвергают изделия из стекла, металлов, термостойких полимерных материалов, из резин. Перед кипячением изделия очищают от органических загрязнений, промывая их водопроводной водой или раствором дезинфицирующих средств, не оказывающих фиксирующее действие, и помещают в специальные ёмкости (с соблюдением мер безопасности при работе с биологическим материалом). Затем промывные воды дезинфицируют.

Паровым методом с использованием водяного насыщенного пара под избыточным давлением дезинфицируют изделия из стекла, металлов, резин, латекса, из термостойких полимерных материалов. Их складывают в стерилизационные коробки (биксы) и помещают в паровой стерилизатор (автоклав). Автоклавирование проводят при 110°С в течение 20 мин. При этом предварительная очистка изделий от органических загрязнений не требуется.

Воздушным методом дезинфицируют изделия из стекла, металлов, силиконовой резины в открытом виде на полках воздушного стерилизатора (сухожаровая печь) при 120°С в течение 45 мин. При этом изделия обязательно предварительно очищают от органических загрязнений.

Физический метод прост, экологически чист и безопасен для персонала.

Химический метод сводится к обеззараживанию инструментария растворами химических веществ-дезинфектантов. Изделия погружают в них сразу после использования у пациентов, предварительно очистив от органических загрязнений, чтобы не снизить эффективность рабочих растворов. Разъёмные изделия дезинфицируют в разобранном виде (каналы и полости изделий должны быть заполнены дезинфицирующим раствором). Изделия, не соприкасавшиеся непосредственно с пациентом, можно обеззараживать путём 2-кратного протирания салфеткой, смоченной раствором дезинфицирующего средства.

В качестве дезинфектантов применяют вещества, оказывающие вирулицидное действие на возбудителей вирусных гепатитов и ВИЧ-инфекции — аламинол, жавель, лизоформин-3000, ПВК, комбидезинфектант инструментария и др.), а в противотуберкулёзных учреждениях – вещества микобактерицидного действия (сайдекс, септодор, хлорамин Б, жавелион). Дезинфекцию проводят по режимам, рекомендованным для этих инфекций. Дезинфицирующие средства, не обладающие указанными свойствами, не должны использоваться для обеззараживания изделий медицинского назначения.

Хлорсодержащие вещества, а также большинство средств, полученных на основе перекиси водорода, предназначаются для дезинфекции изделий из коррозионностойких металлов, резин, пластмасс, стекла. Применять спирт этиловый рекомендуется только для дезинфекции изделий из металлов после предварительной очистки их от органических соединений. Альдегидсодержащие средства целесообразно использовать для дезинфекции изделий из стекла, металлов, полимерных материалов, в том числе и термолабильных. Допускается применение с этой целью и перекиси водорода.

В целях предотвращения выработки устойчивости микроорганизмов к дезинфицирующим средствам рекомендуется еженедельная смена химических дезинфектантов, входящих в группу препаратов, содержащих иные активно действующие вещества.

По окончании дезинфекции медицинские изделия тщательно промывают проточной водой, механически очищают ершами, щётками, салфетками, после чего используют по назначению или приступают к следующему этапу стерилизации — предстерилизационной очистке (ПСО).

Предстерилизационную очистку изделий медицинского назначения осуществляют с целью удаления белковых, жировых и механических загрязнений, а также остатков лекарственных препаратов. Новые инструменты подвергают предстерилизационной очистке для удаления промышленной смазки и загрязнения.

Для проведения ПСО используют промышленные специальные химические средства (биолот, бланизол, векс-сайд, и др.) или готовят моющие растворы, содержащие перекись водорода и стиральный порошок, произведенный на основе кальцинированной соды (Лотос, Лотос-автомат, Астра, Виксан-мед, Прогресс). Для снижения коррозионного воздействия в полученный раствор добавляют ингибитор коррозии — 0,14 %-ный олеат натрия.

ПСО осуществляют ручным или механизированным (использование специального моечного оборудования) способом. В первом случае можно применять замачивание или кипячение в моющем растворе.

ПСО с применением замачивания предусматривает полное погружение изделия в раствор на время, необходимое для вирулицидного или туберкулицидного действия (согласно инструкции к препарату). Далее каждое изделие моют ершом или тампоном в том же растворе, ополаскивают вначале проточной питьевой водой, а затем — дистиллированной. Обработанное таким образом изделие сушат горячим воздухом при 85°С до полного исчезновения влаги. Замачивание изделий может быть совмещено с их дезинфекцией при условии применения растворов дезинфицирующих средств, оказывающих и вирулицидное (или туберкулицидное), и моющее действие (пероксимед, дезэффект, лизетол АФ, дюльбак ДТБ/Л, триацид, КДИ и др.).

ПСО можно проводить путём кипячения в моющем растворе в течение 15 мин с момента его закипания, после чего изделия моют, ополаскивают и сушат так же, как и после замачивания.

Моющие растворы для ПСО обычно используют многократно до появления видимых признаков их загрязнения (изменение цвета, помутнение, появление осадка, хлопьев). А растворы, приготовленные на основе перекиси водорода и стиральных порошков, используют до 6 раз в течение одной рабочей смены.

Качество ПСО оценивают путём постановки азопирамовой (наличие следов крови) и фенолфталеиновой (наличие остатков моющих средств) проб. При этом обычно обследуют 1 % одновременно обработанных изделий (но не менее 3 единиц) в отделениях ЛПО и 1 % от каждого наименования изделий в центральных стерилизационных отделениях (ЦСО). Организует и проводит контроль качества ПСО старшая медсестра отделения (не реже одного раза в неделю) и главная медсестра ЛПО (не реже одного раза в месяц). Контроль качества в ЦСО проводится ежедневно.

Для постановки азопирамовой пробы используют раствор азопирама, содержащий 10 % амидопирина, 0,1 % анилина солянокислого и 90 % этилового спирта. Непосредственно перед постановкой пробы раствор азопирама смешивают с равным объёмом 3 %-ного раствора перекиси водорода (раствор годен в течение не более 2 ч). На контролируемое изделие наносят несколько капель раствора с помощью пипетки или протирают марлевой салфеткой, смоченной реактивом, либо последний набирают в шприц и пропускают через обработанные иглы. В катетеры и полые инструменты реактив вводят с помощью чистого шприца или пипетки. Реактив оставляют в контролируемом предмете не более 1 мин, после чего выпускают на марлевую салфетку. При отсутствии следов крови цвет раствора не меняется, при их наличии немедленно или на протяжении 1 мин появляется фиолетовое окрашивание, переходящее в розово-сиреневое. Если на контролируемых изделиях имеются ржавчина, следы кислот или хлорсодержащих окислителей (плохо ополоснутые изделия после моющего раствора), наблюдается буроватое окрашивание. Окрашивание реактива, наступившее позже 1 мин, не учитывается. Изделия, давшие положительную реакцию при постановке азопирамовой пробы, повторно подвергают предстерилизационной очистке.

Все изделия, подвергнутые контролю с азопирамовым реактивом, независимо от результатов обмывают водой или протирают тампоном со спиртом и повторно подвергают ПСО.

Для контроля полноты ополаскивания инструментария от щелочных добавок моющего раствора используют 0,1 %-ный спиртовой раствор фенолфталеина, 2–3 капли которого наносят на вымытое изделие. При появлении розового окрашивания инструменты подвергают повторной промывке проточной водой в течение 5 мин.

Собственно стерилизация является завершающим этапом обработки изделий медицинского назначения. Она проводится после дезинфекции и предстерилизационной очистки. Цель её — полное уничтожение всех патогенных и непатогенных микроорганизмов, в том числе и споровых форм.

Общепринятыми методами стерилизации являются паровой, воздушный, химический, газовый. При использовании первых трех изделия упаковывают в специальные упаковочные материалы, разрешенные к применению в Республике Беларусь (бумага мешочная влагопрочная, бумага упаковочная высокопрочная, бумага крепированная и другие стерилизационные упаковочные материалы) или в специальные стерилизационные коробки (биксы) с лавсановыми фильтрами или без них. На упаковках с простерилизованными изделиями должна быть отмечена дата стерилизации. Срок сохранения стерильности изделий, простерилизованных в герметичной упаковке из специальных упаковочных материалов и в биксах с фильтрами, составляет 20 суток, в другой негерметичной упаковке, а также в биксах без фильтров — трое суток. При использовании воздушного, а в некоторых случаях и парового либо газового методов допускается стерилизовать инструменты в не упакованном виде — в открытых лотках, после чего их помещают на «стерильный стол» и используют в течение одной рабочей смены.

При паровом методе стерилизующим средством служит водяной насыщенный пар, подаваемый под избыточным давлением. Стерилизацию осуществляют в паровых стерилизаторах, используя два режима: 1) давление
2,0 кгс/см2 , температура 132°С, экспозиция 20 мин; 2) соответственно —
1,1 кгс/см2, 120°С, 45 мин. Паровым методом стерилизуют хирургические инструменты, детали приборов, выполненные из коррозионно-стойких металлов, стекла, шприцы с пометкой 200°С, хирургическое бельё, перевязочный и шовный материалы, изделия из резины (перчатки, трубки, катетеры, зонды), изделия из латекса, из некоторых видов пластмасс. Режимы стерилизации этих изделий подбирают дифференцированно. Например, для ослабления неблагоприятного воздействия пара хирургические перчатки, нити хирургические капроновые крученые стерилизуют при 120°С, а хирургическое белье, перевязочный материал, почти все виды лигатурного шовного материала — при 132°С. Хранить стерильный шовный материал в этиловом спирте запрещается. Он должен храниться в простерилизованной упаковке в шкафах для стерильных изделий. Неиспользованный шовный материал разрешается стерилизовать повторно (только один раз) при 120°С.

При использовании воздушного метода стерилизацию осуществляют сухим горячим воздухом при 160°С в течение 150 мин или при 180°С —
60 мин. Качество стерилизации зависит от равномерного распределения горячего воздуха, поэтому важно правильно загрузить стерилизатор, чтобы обеспечить свободный доступ воздуха к стерилизуемым изделиям.

Воздушным методом стерилизуют хирургические, гинекологические, стоматологические инструменты, детали приборов и аппаратов, выполненные из коррозионно-нестойких металлов, шприцы, иглы, изделия из силиконовой резины.

В настоящее время появились стерилизаторы, в которых стерилизующим средством являются горячие (190–250°С) стеклянные шарики (гласперленовые стерилизаторы). Они используются в основном в стоматологии для стерилизации боров, алмазных головок, зубных зондов и т. д. Изделия стерилизуют в неупакованном виде и сразу применяют по назначению.

При использовании химического метода изделия стерилизуют растворами химических средств. Данный метод менее эффективен по сравнению с рассмотренными выше методами. Однако многие современные приборы и аппараты снабжены оптическими системами, включающими термолабильные полимеры, на которые высокая температура и влага действуют негативно. Для стерилизации таких изделий используют химические средства, разрешенные к применению для газовой стерилизации. Таковыми являются альдегидсодержащие вещества, перекись водорода (6 %-ный раствор); применять для этих целей средства, не обладающие спороцидной активностью, не разрешается. Стерилизацию химическим методом производят при полном погружении изделия в раствор. Если изделие разъёмное, то его погружают в разобранном виде, чтобы были заполнены раствором все каналы и полости; если изделие длинное, его укладывают по спирали. Во избежание разбавления концентрации стерилизующих растворов погружаемые в них изделия должны быть сухими. После соответствующей экспозиции изделия извлекают из раствора стерильными инструментами с соблюдением правил асептики, а затем промывают стерильной водой, налитой в стерильные ёмкости. Промытые стерильные изделия после удаления остатков жидкости стерильными инструментами сразу переносят в стерильные биксы, выложенные стерильной простыней, на срок до 3 суток или сразу используют по назначению.

При использовании газового метода стерилизующим средством служат летучие химические вещества — окись этилена, её смесь с бромистым метилом в весовом соотношении 1:2,5 (смесь ОБ), пары формальдегида в этиловом спирте. Стерилизацию газовым методом проводят в стационарных газовых стерилизаторах или в портативных аппаратах (микроанаэростатах), помещенных в термостат либо на водяную баню для поддержания соответствующей температуры. Температурный режим газовой стерилизации (18°С, 35°С, 55°С) и её экспозиция зависят от материала изделия. Так, оптические приборы и кардиостимуляторы стерилизуют смесью ОБ при 35°С в течение
4 часов, а изделия из полимерных материалов, стекла и металлов — при 55°С и той же экспозиции. В случае снижения температуры стерилизации (18°С) экспозицию увеличивают до 16 часов.

Все изделия перед стерилизацией данным методом тщательно просушивают и упаковывают в разрешенные к применению упаковочные материалы. От вида последнего зависит срок сохранности стерильности. Изделия, простерилизованные в упаковке из полиэтиленовой пленки, сохраняют стерильность в течение 5 лет, в пергаменте или бумаге — 20 суток.

Изделия, простерилизованные газовым методом, перед использованием обязательно подвергают дегазации в вентилируемом помещении. Причем в случае использования для стерилизации смеси ОБ или окиси этилена дегазацию осуществляют в течение:

– суток — для изделий из стекла и металлов;

– 5–13 суток — для изделий из полимерных материалов, предназначенных для кратковременного (до 30 мин) контакта со слизистыми оболочками, тканями, кровью;

– 14 суток — для тех же изделий, предназначенных для длительного (более 30 мин) контакта со слизистыми оболочками, тканями, кровью;

– 21 суток — для изделий, используемых у детей.

После стерилизации парами формальдегида дегазация изделий, изготовленных из полимерных материалов, металлов и стекла, не требуется. Изделия из резины и пластмасс, контактирующие с кровью, при аналогичной стерилизации подвергаются дегазации в течение 2 суток.

Контроль качества стерилизации предусматривает оценку её эффективности и проверку параметров режима. Последние проверяют, используя физические, химические и бактериологические методы. Персонал ЛПО осуществляет самоконтроль режимов стерилизации физическим и химическим методами при каждой загрузке материала; бактериологический контроль — ежемесячно. Специалисты ЦГЭ проводят плановый контроль с использованием всех методов не реже 1 раза в квартал.

Контроль физическим методом проводят с помощью средств измерения температуры (термометры), давления (мановакуумметры) и времени (таймеры, секундомеры, часы на панели аппаратов). Температурный режим проверяют с помощью максимальных термометров, помещенных в разные точки стерилизаторов. Результаты проверки указанных параметров заносят в контрольные журналы в течение всего цикла стерилизации.

Контроль с помощью химического метода предназначен для оперативной оценки одного или двух параметров работы стерилизатора. Для этого используют химические и термохимические индикаторы (тесты), размещенные внутри и снаружи биксов. Химические тесты (индикаторы) представляют собой запаянные в ампулы или стеклянные трубочки химические вещества, имеющие фиксированную точку плавления при строго определённой температуре. Они контролируют температуру стерилизации путём изменения своего агрегатного состояния и цвета. Наиболее часто применяются следующие химические тесты:

– бензойная кислота с красителем, сера высокопробная без красителя — для режима парового стерилизатора 120±2°С;

– мочевина с красителем, никотинамид с красителем, Д(+) манноза с красителем — для режима парового стерилизатора 132±2°С;

– левомицетин — для режима воздушного стерилизатора 160±2°С;

– винная кислота, тиомочевина, гидрохинон — для режима воздушного стерилизатора 180°±2°С.

Термохимические индикаторы — это полоска бумаги с нанесенной термоиндикаторной краской, цвет которой изменяется только при регламентированных режимах стерилизации — температуры и экспозиции. Чёткое изменение её цвета свидетельствует о правильной и полной стерилизации инструментария. Термохимические индикаторы помещают внутрь упаковки инструментов или наклеивают снаружи на упаковку.

Контроль работы стерилизационной аппаратуры проводят также бактериологическим методом с использованием биологических тестов, оценивая гибель спор термоустойчивых микроорганизмов. Отсутствие роста тест-культур при бактериологических исследованиях в сочетании с удовлетворительными результатами физического и химического контроля параметров стерилизации свидетельствует об эффективности работы стерилизационной аппаратуры. В последнее время бактериологический контроль осуществляют с помощью аналогов споровых культур — специальных полосок бумаги, обработанных споровой тест-культурой и красителем (так называемые интеграторы). Их помещают в упаковки медицинских инструментов перед стерилизацией (снаружи и внутри). Четкое черное окрашивание интеграторов свидетельствует о гибели тест-культуры, т. е. о полной стерилизации изделий. Интеграторы удобны тем, что с их помощью результаты бактериологического контроля определяются мгновенно и не требуют специальных лабораторий для анализа.

Дезинсекция

Дезинсекция — это комплекс противоэпидемических мероприятий, направленных на уничтожение членистоногих, имеющих эпидемическое и санитарно-гигиеническое значение, и на защиту человека от них. Истребительные мероприятия проводятся на территории населенных пунктов, в закрытых помещениях и в окружающей среде. Для дезинсекции используют следующие средства:

– физические (сжигание, сухой или влажный горячий воздух, горячая вода, пар, низкие температуры, генераторы звуковых колебаний);

– механические (ловушки, клеевые поверхности бумаги);

– химические соединения (инсектициды)

– биологические (синтетические регуляторы развития членистоногих; возбудители их болезней; хищники-энтомофаги);

– репелленты и аттрактанты (отпугивающие и привлекающие вещества).

Инсектииды в зависимости от путей проникновения в организм членистоногих подразделяют на контактные (проникают через покровы тела), кишечные (проникают через органы пищеварения) и фумиганты (проникают через дыхательные пути). В качестве инсектицидов широко используют препараты следующих групп химических соединений:

– фосфорорганические соединения (ФОС);

– пиретрины и пиретроиды;

– карбаматы;

– инсектициды других химических групп (бура, борная кислота, бензилбензоат, бутадион).

ФОС составляют 25–30 % от всех применяемых в мире инсектицидов. Большинство из них оказывают на членистоногих контактное и кишечное действие. К этой группе соединений относятся такие известные и наиболее часто используемые препараты, как хлорофос, карбофос, «Дурсбан-про», «Байтекс».

Пиретрины (инсектициды, полученные из некоторых видов ромашки) и пиретроиды (синтетические препараты, полученные на основе пиретрума) составляют до 50 % применяемых в мире инсектицидов. Они наиболее эффективны из всех известных препаратов и представляют собой преимущественно контактные яды. К ним, в частности, относятся: пиретрум, перметрин («Амбуш»), «Торнадо», «Арсенал», «Машенька», «Нитион», «Ниттифор»
и др.

Карбаматы отличаются высокой аллергенностью и медленным разложением в окружающей среде. Поэтому они не нашли широкого практического применения. По механизму действия карбаматы сходны с ФОС. Наиболее известны из них «Байгон», «Мускачид».

Из инсектицидов других химических групп на практике часто используют борную кислоту и препараты, изготовленные на её основе («Боракс», «Коба», «БАФ»), а также аминогидразоны («Комбат»), авермектины («Унистар»), органические соли лития («Рейд», «Мегакилл»).

При выборе инсектицидов учитывают биологические особенности членистоногих (их вид, стадию развития, устойчивость к инсектицидам), свойства препарата (спектр действия, концентрация активно действующего вещества, форма и способ применения, токсичность для людей и животных), тип и санитарно-техническое состояние обрабатываемого объекта. Возможна порча поверхностей используемыми препаратами, а также отрицательное влияние их на окружающую среду.

Дезинсекцию можно проводить путём:

– орошения растворами инсектицидов оборудования, мебели, поверхностей в помещениях, транспортных средств и др.;

– окуривания герметичных помещений дымами или туманами инсектицидов;

– нанесения инсектицидов в виде лаков, дустов, гелей на поверхности;

– применения инсектицидных приманок локально в местах скопления, укрытия или перемещения насекомых;

– импрегнации растворами, дустами инсектицидов либо репеллентами одежды, палаток, штор, пологов, постельных принадлежностей и др.;

– нанесения инсектицидов в форме шампуней, лосьонов, мазей на различные участки тела человека;

– обработки по эпидемическим показаниям растительности, водных поверхностей, строений, природных очагов инфекции с помощью водных растворов, суспензий, аэрозолей.

При этом следует иметь в виду, что даже самые эффективные методы и средства дезинсекции не могут обеспечить 100 %-ную гибель популяции членистоногих.

При проведении дезинсекционных мероприятий в ЛПО запрещается использовать препараты, вызывающие аллергическую реакцию у людей. Для обработки помещений следует применять препараты в виде инсектицидных гелей, клеевых поверхностей, микрокапсулированных средств, ловушек. Методы орошения и опыления в ЛПО не применяются.

Дератизация

Дератизация — комплекс противоэпидемических мероприятий, направленных на уничтожение грызунов. Она предусматривает работы по истреблению синантропных грызунов в населенных пунктах, помещениях, на транспорте, а также (по эпидемическим показаниям) диких грызунов, являющихся носителями и резервуарами инфекционных заболеваний в природных условиях.

Различают физические (генераторы ультразвуковых колебаний), механические (капканы, ловушки, живоловки), химические (яды острого действия, антикоагулянты — ратициды, или родентициды) и биологические (микроорганизмы, вызывающие заболевания грызунов) средства, используемые для дератизации. Наиболее эффективны из них химические методы дератизации. Особенно часто в качестве ратицида применяется зоокумарин. Он по механизму действия относится к антикоагулянтам, оказывает кумулятивное действие в организме грызунов, длительно хранится, не теряя токсических свойств, для человека и домашних животных практически безопасен. Антикоагулянтами также являются препараты «Ратиндан», «Торнадо», «Шторм», «Бараки». Они выпускаются в основном в виде готовых приманок, брикетов, гранул.

К ядам острого действия относятся фосфид цинка, «Арсенал». Они вызывают гибель животных в результате нарушения тканевого дыхания или пищеварения. Препараты используются в виде приманок, некоторые — для опыления нор. С целью истребления грызунов применяют также ядовитые газы — сернистый ангидрид, хлорпикрин, бромистый метил и др. В настоящее время перспективным направлением считается использование хемостерилянтов — веществ, негативно действующих на половую систему грызунов, снижая их плодовитость.

Дератизацию объектов проводят путём:

– раскладки пищевых приманок, содержащих ратициды, в местах скопления и перемещения грызунов в помещениях и в окружающей среде;

– опыливания входов в норы и путей перемещения грызунов;

– применения механических средств отлова грызунов в помещениях и населенных пунктах;

– газации нор, изолированных складских помещений, транспорта.

При выборе ратицида учитывают биологические особенности грызунов, их чувствительность к активно действующему веществу, а также характер воздействия и степень токсичности препарата для людей и животных, меру его влияния на окружающую среду и обрабатываемые объекты.

При дератизации в ЛПО запрещается применять яды острого действия; следует использовать в основном антикоагулянты, но в первую очередь — механические средства борьбы (ловушки, клеевые поверхности, обработанные ратицидами). Приманки раскладывают в специальные ёмкости, доступные для грызунов, но исключающие возможность переноса ядов на пищевые продукты, медикаменты. Ядовитые покрытия наносят только на вертикальные поверхности специальных укрытий для грызунов. Ёмкости с приманками и укрытиями должны быть пронумерованы и выданы в отделение учреждения под расписку администрации ЛПО. После окончания дератизации их укладывают в полиэтиленовые пакеты и уничтожают.

ЗАДАНИЯ ДЛЯ САМОСТОЯТЕЛЬНОЙ РАБОТЫ СТУДЕНТА

1. При обслуживании визитов на дому врач выявил больного с жалобами на острое кишечное заболевание; был поставлен диагноз «дизентерия?». В связи с тяжелым состоянием больной был доставлен машиной скорой помощи в инфекционный стационар.

Составьте схему проведения заключительной дезинфекции в квартирном очаге дизентерии. Укажите, кто её организует и проводит.

2. Составьте схему проведения текущей дезинфекции в одной из групп ДДУ в период действия карантина по заболеванию вирусным гепатитом А. Укажите, кто организует и проводит дезинфекцию.

3. В хирургическом отделении больницы проведена совмещенная с дезинфекцией предстерилизационная очистка медицинского инструментария после операции по поводу гнойного аппендицита. Был использован препарат «Пероксимед». Время замачивания соответствовало режиму дезинфекции при бактериальных инфекциях.

Укажите, правильно ли была проведена совмещенная с дезинфекцией предстерилизационная очистка. Предложите методы оценки качества последней.

4. Укажите сроки сохранности стерильности медицинских изделий при стерилизации:

– в биксах с лавсановыми фильтрами;

– в бумаге крепированной;

– в бумаге мешочной влагопрочной;

– в открытом виде;

– в запаянной полиэтиленовой пленке;

– в биксах без фильтров.

5. В инфекционную больницу транспортом скорой помощи доставлен больной с диагнозом «брюшной тиф». Больной проживает в пригороде в частном домовладении.

Укажите, кто подает заявку на проведение заключительной дезинфекции в квартирном очаге, кто её проводит. Приведите её схему, назовите методы и используемые для нее средства. Кто и как проводит дезинфекцию транспорта, доставившего инфекционного больного.

6. Больной сальмонеллёзом, проживающий в отдельной благоустроенной двухкомнатной квартире вместе с женой, работницей ткацкой фабрики, по клиническим показаниям оставлен лечиться на дому.

Составьте схему проведения текущей дезинфекции в квартирном очаге острой кишечной инфекции. Укажите, кто организует и проводит дезинфекцию, какие при этом используются методы и средства.

7. В старшей группе ДДУ выявлен ребёнок, больной ветряной оспой. В группе объявлен карантин на срок максимального инкубационного периода болезни, в течение которого за остальными детьми установлено медицинское наблюдение.

Укажите, необходимо ли провести дезинфекцию в группе. Если да – то укажите её вид и объём.

8. В терапевтическом отделении больницы выявлен больной с подозрением на заболевание корью. До перевода в инфекционную больницу он временно был помещён в изолятор.

Укажите, необходима ли заключительная дезинфекция в терапевтическом отделении. Какие противоэпидемические мероприятия, направленные на разрыв механизма передачи, можно рекомендовать в данном случае?

ЛИТЕРАТУРА

Основная

, Яфаев Р. Х. Эпидемиология: Учебник. – М.: Медицина, 1989. –
С. 225–231.

, , Основы дезинфекции и стерилизации: Учеб. пособие. – Мн., 1998. – 160 с.

Дополнительная

Дезинфектология: Учеб. пособие. – Ростов-на-Дону, 2003. –
448 с.

Практическое руководство по применению средств дезинфекции и стерилизации в лечебно-профилактических учреждениях. Изд. 2-е / Под ред. . – Смоленск, 2000. – 160 с.

Г. Перспективы и проблемы современной дезинфектологии // Ж. «Дезинфекционное дело». – 2002. – № 3. – С. 19–25.

Иструктивно-методические документы

«Санитарные правила по осуществлению дезинфекционной деятельности», утвержденные постановлением Главного государственного санитарного врача Республики Беларусь от 01.01.2001 г. № 000.

Приказ № 000 от 01.01.2001 г. Министерства здравоохранения Республики Беларусь «О проведении дезинфекции и стерилизации учреждениями здравоохранения».

Контроль качества стерилизации изделий медицинского назначения: Метод. указания МУ . – Мн., 1999.

Из за большого объема этот материал размещен на нескольких страницах: 1 2 3 4