Skjoldbruskkjertelknuter representerer en klinisk utfordring på grunn av deres varierende natur, der både godartede og ondartede knuter kan se like ut på bildediagnostikk. Mange testmetoder er utviklet for å skille mellom disse, men de har sine begrensninger, spesielt når det gjelder spesifisitet og positiv prediktiv verdi (PPV). Blant de nyere metodene, har DNA-metylasjon fått oppmerksomhet for sitt potensial til å forbedre diagnostikken.

Tradisjonelt har molekylære tester som ThyroidPrint blitt brukt for å analysere uttrykket av gener i skjoldbruskkjertelknuter. ThyroidPrint er en test som benytter kvantitativ PCR for å evaluere aktiviteten til ti gener og har vist seg å ha høy følsomhet og negativ prediktiv verdi (NPV). I en studie i Chile ble testens følsomhet rapportert å være 91% (95% CI, 82%–96%), mens spesifisiteten var 88% (95% CI, 82%–92%). Til tross for høy følsomhet og NPV, har slike tester begrenset evne til å forhindre unødvendige skjoldbruskkjerteloperasjoner, ettersom de ikke alltid kan skille mellom godartede og ondartede knuter. En stor utfordring ligger i det faktum at det finnes få kreftegenskaper som er spesifikke for skjoldbruskkreft, og det er derfor vanskelig å skille mellom de to.

For eksempel er BRAFV600E-mutasjonen en av de få kjente kreftspesifikke markørene for skjoldbruskkreft, og den er assosiert med en sensitivitet på 99,3%. Imidlertid er denne mutasjonen kun til stede i 45% av papillekreft i skjoldbruskkjertelen og er ikke til stede i follikulær kreft. Andre genetiske endringer, som RET/PTC og PAX8-PPARg1 rearrangementer, samt RAS-mutasjoner, er heller ikke spesifikke for kreft, men assosiert med kreft. Dette har ført til utviklingen av mer avanserte diagnostiske metoder som benytter DNA-metylasjon for å overvinne disse utfordringene.

DNA-metylasjon er en epigenetisk modifikasjon som påvirker genuttrykk uten å endre den underliggende DNA-sekvensen. Denne modifikasjonen spiller en viktig rolle i kreftutvikling, og forskningen har vist at det finnes unike DNA-metylasjonsmønstre som kan brukes til å skille mellom godartede og ondartede skjoldbruskkjertelknuter. Våre egne studier har påvist at benign og malign vev, samt tilstøtende skjoldbruskkjertelvev, har distinkte metylasjonsmønstre som potensielt kan brukes i diagnostikken. Dette har ført til utviklingen av en ny diagnostisk tilnærming kalt "Diagnostic DNA Methylation Signature" (DDMS).

DDMS-metoden er en presis teknikk som benytter en prosess hvor genomisk DNA blir metylert og deretter analysert for å identifisere spesifikke mønstre assosiert med enten benign eller malign natur. En viktig fordel med denne metoden er at den kan oppdage subtile epigenetiske endringer som skjer i løpet av kreftutvikling, og dermed gi mer presis informasjon enn tradisjonelle molekylære tester som kun fokuserer på genetiske mutasjoner.

I tillegg til den teknologiske innovasjonen som DDMS representerer, er det viktig å merke seg at diagnosen av skjoldbruskkjertelknuter ikke bare er et spørsmål om å identifisere kreft. Mange skjoldbruskkjertelknuter er godartede, og unødvendige kirurgiske inngrep kan ha alvorlige konsekvenser, inkludert skade på skjoldbruskkjertelen og livskvalitetsproblemer for pasientene. Derfor er det avgjørende å utvikle metoder som har høy spesifisitet for å minimere risikoen for overbehandling.

Samlet sett er det essensielt å forstå at ingen diagnostisk metode er perfekt, men fremskritt innen DNA-metylasjon kan bidra til å forbedre nøyaktigheten i vurderingene av skjoldbruskkjertelknuter. Selv om DDMS og andre metoder basert på DNA-metylasjon har lovende resultater, kreves det fortsatt ytterligere forskning for å validere og optimalisere disse teknikkene for klinisk bruk.

Hvordan presisjonsmedisin transformerer behandlingen av multiple myelom gjennom avanserte sekvenseringsteknologier

Sekvenseringsteknologier har de siste tiårene vært en katalysator for gjennombrudd innen presisjonsmedisin, og har ført til en ny æra i klinisk onkologi. Innen presisjonsmedisin er det teknologiene som genererer omfattende biologiske data, samt de sofistikerte beregningsrammeverkene som tolker disse dataene, som utgjør grunnpilarene. DNA- og RNA-sekvensering kan identifisere genetiske og transkriptomiske forandringer i kreftcellene, noe som bidrar til å klassifisere kreftsubtyper, vurdere sykdomsrisiko og skreddersy behandlinger til den enkelte pasient.

Selv om vi fortsatt har mange hull i forståelsen av kreftens kompleksitet, og til tross for at det er et begrenset antall pasienter som får fullt utbytte av målrettede tilnærminger, skjer overgangen fra forskning til klinisk behandling raskt. Dette er avgjørende for den hurtige utviklingen og kliniske implementeringen av nye behandlingsmetoder. Multiple myelom (MM), en kreftform som oppstår i plasmacellene i benmargen som produserer antistoffer, er et eksempel på hvordan presisjonsmedisin kan revolusjonere behandlingen av pasienter. Til tross for fremskritt i forståelsen av den genetiske landskapet i MM, opplever mange pasienter et tilbakevendende sykdomsforløp og går tom for godkjente behandlingsalternativer. Dette understreker viktigheten av presisjonsmedisin for denne pasientgruppen.

I en nylig pilotstudie ved vårt senter viste vi at neste generasjons sekvensering (NGS) kan veilede behandlingen av pasienter med tilbakevendende/refraktær MM. Ved hjelp av den nye programvareplattformen DAPHNI kombinerte vi hel-eksom-sekvensering (WES) med RNA-sekvensering (RNA-seq) for å identifisere handlingsbare genetiske forandringer som enkelt nukleotidvarianter (SNV), kopinummeralterasjoner (CNA) og forstyrrelser i genuttrykk og signalveier. Studiene viste at mens DNA-analyse kan gi nyttige behandlingsretningslinjer, kan RNA-analyse ofte avdekke ytterligere terapeutiske muligheter som ikke kan oppdages ved kun DNA-analyse. Av de 21 pasientene som ble behandlet etter anbefalingene fra vår behandlingsplattform, oppnådde 16 (omtrent 76 %) en klinisk respons, definert som en reduksjon i sykdomsmarkører på 25 % til 49 %. Pasientene ble behandlet med forskjellige legemidler, inkludert trametinib, som retter seg mot MEK i MAPK-banen ved tilstedeværelse av mutasjoner i NRAS, KRAS eller BRAF, og venetoklaks, som er foreskrevet for pasienter med høy BCL2-uttrykk.

Bygget på vårt første arbeid har DAPHNI-plattformen gjennomgått betydelige fremskritt og har utviklet seg til et omfattende forsknings- og datanalyseverktøy for presisjonsmedisin, kjent som RADAR-systemet. Denne plattformen benytter seg av avanserte arbeidsflyter, utviklet ved hjelp av Nextflow, et verktøy som muliggjør raske og skalerbare beregningspipelines. Dette gjør det lettere å håndtere komplekse analyser og gir høy tilpasningsevne til spesifikke behov i klinisk arbeid. Videre har vi utvidet vår samling av handlingsbare genetiske forandringer til å inkludere flere databaser enn bare Clinical Interpretation of Variants in Cancer (CIViC), og analyser av SNV og CNA avdekker nå den subklonale strukturen i hver tumor. Genuttrykksanalyse er blitt raffinert for mer presis måling av signalveiers aktivitet. Nye indikatorer for sykdomsprogresjon og genomisk stabilitet har blitt integrert i arbeidsflyten. Videre er vi nå i ferd med å implementere germlinetest for å identifisere pasienter med høyere risiko for kreftdisposisjon.

I tillegg har vi utvidet vårt arbeid til å omfatte prediktive markører for respons på nye immunterapier som chimeriske antigenreseptor (CAR) T-celler og bispesifikke antistoffer, som har vist bemerkelsesverdig effektivitet hos pasienter med behandlingsresistent MM. RADAR-plattformen tilbyr innsikt i genetiske og transkriptomiske variasjoner som er avgjørende for å tilpasse immunterapier. Basert på vår erfaring med integrert analyse av multi-omisk data, har vi designet RADAR til å inkludere flere lag med forskjellige datatyper, som både omiske data og immunassay-data, for å forbedre pasientstratifisering og behandlingstiltak. Dette inkluderer integrering av flowcytometri fra tumorens mikromiljø i benmargen og T-celle drepeassays.

Med disse fremskrittene i tankene er det viktig for leseren å forstå hvordan presisjonsmedisin, ved hjelp av helhetlige analyser som kombinerer DNA og RNA-sekvensering, åpner nye behandlingsmuligheter for pasienter med vanskelig behandlingsbar kreft som MM. En viktig forståelse som må etableres er at til tross for de store fremskrittene vi har gjort, er vi fortsatt i en tidlig fase når det gjelder å fullt ut forstå og implementere disse teknologiene i klinisk praksis. Flere utfordringer står fortsatt foran oss, som spørsmål rundt tilgjengeligheten og kostnadene for denne typen avansert medisin, samt det etiske aspektet rundt bruken av omfattende genetiske data.

Hva er potensialet for SSEA-0 som et oncofetal antigen i tidlig kreftdiagnostikk og terapi?

SSEA-0, en spesifikk del av blodgruppeprekursorer, er et lovende mål for diagnostisering og behandling av ulike kreftformer. Det ble først identifisert som en del av en glyko-epitope som er tilstede på en rekke blodgruppeprekursorer, inkludert A, B, H, og Lewis antigener. HAE3-antikroppen, som binder seg spesifikt til SSEA-0, har blitt brukt for å undersøke disse molekylene i detalj, og viser et stort potensial for å anvendes i onkologi.

Blodgruppeprekursorene som SSEA-0 representerer, er essensielle for dannelsen av de mer kjente blodgruppene som A, B og O, men de bærer også et unikt "cryptic" epitop som kan benyttes som biomarkør for tidlig påvisning av tumorer. Dette epitope, som finnes på overflaten av tumorceller, har vist seg å være overuttrykt i brystkreft, spesielt i de aggressive, triple-negative variantene som mangler de klassiske hormonreseptorene, som østrogen, progesteron og HER2.

Glyko-mikroarrayanalyse har gitt innsikt i hvordan HAE3-antikroppen binder seg til forskjellige blodgruppeprekursorer, og har bekreftet at SSEA-0 er et målrettet antigen som skiller seg ut fra andre T/Tn-relaterte antigener. I eksperimentelle tester ble det vist at HAE3 har høy spesifisitet for SSEA-0 uten kryssreaktivitet med andre T/Tn-epitoper, noe som gjør det til et svært nøyaktig verktøy for diagnostisering.

I tillegg til blodgruppenhetene, har det også blitt dokumentert at SSEA-0 er overuttrykt i flere andre epiteliale kreftformer, som lungekreft, prostatakreft, blærekreft og eggstokkreft. Dette antyder at SSEA-0 kan være et universelt mål for terapeutiske strategier rettet mot en rekke krefttyper.

I kliniske studier har det blitt påvist at SSEA-0-positiviteten i sirkulerende tumorceller (CTC) fra pasienter med metastatisk brystkreft er betydelig høyere enn i primære svulster, noe som åpner for potensialet til å bruke SSEA-0 som et mål for både tidlig kreftdiagnostikk og som et verktøy for å overvåke metastatisk sykdom. Det er videre identifisert at en stor andel av CTCene fra pasienter med triple-negative brystkreft (TNBC) er SSEA-0-positive, noe som underbygger betydningen av denne markøren.

Når det gjelder terapeutiske anvendelser, kan SSEA-0 brukes som en målrettet behandlingsstrategi. Det finnes muligheter for å utvikle antistoffer som spesifikt binder seg til dette epitope, og dermed eliminere tumorceller uten å skade sunne celler. Dette kan føre til utvikling av mer presise og effektive behandlingsmetoder for kreft, spesielt i tilfeller hvor tradisjonelle terapier har begrenset effekt.

Det er også verdt å merke seg at de glyko-konjugatene som inneholder SSEA-0, kan benyttes som vaksiner for tumorbehandling. Siden blodgruppeprekursorene er naturlige glyko-konjugater, har de et særskilt kompleks karbohydratmønster som kan være mer effektivt i å stimulere immunresponsen sammenlignet med de mer kjente O-kjernene. Dette kan åpne for nye terapeutiske muligheter innen immunterapi.

Syntesen av slike komplekse blodgruppeprekursorer er utfordrende, men ikke umulig. Forskere har begynt å utvikle metoder for å designe HAE3-positive forbindelser ved å stabilisere de enklere O-kjernene gjennom spesifikke strukturelle modifikasjoner. Det er også gjort interessante funn hvor HAE3 binder seg til sulfaterte glykolipider som SM1a, som viser at denne antistoffteknologien kan utvides til å omfatte en rekke forskjellige glyko-konjugater.

En annen fremtidig retning er utforskningen av HAE3-positiviteten i metastatiske svulster og sirkulerende tumorceller. Dette kan muliggjøre mer tidlig påvisning av kreft, som vil være avgjørende for å forbedre prognosen hos pasienter med aggressive kreftformer. Samtidig kan utviklingen av SSEA-0-spesifikke terapeutiske strategier føre til behandlinger som er mer målrettede og mindre skadelige for pasientene.

For å oppnå dette, kreves det videre forskning på mekanismene bak SSEA-0 uttrykk og hvordan man kan manipulere disse for å utvikle effektivere behandlinger. Den kommende utviklingen av glyko-konjugater og metoder for syntese av blodgruppeprekursorer vil være et viktig skritt på veien mot å gjøre SSEA-0 til et sentralt mål i kampen mot kreft.

Hvordan EV Click Chips og RT-ddPCR Kan Bruke Ekstracellulære Vesikler i Diagnostikk av HCC

Hepatocellulær karsinom (HCC) er en ledende årsak til kreftdød på verdensbasis, og tidlig diagnostikk er avgjørende for å forbedre pasientenes prognose. Nye teknologiske fremskritt har ført til utviklingen av mer presise metoder for påvisning av HCC i de tidlige stadiene, spesielt ved hjelp av ekstracellulære vesikler (EVs) som biomarkører. EV Click Chips og RT-ddPCR er to teknologier som spiller en viktig rolle i å forbedre påvisningen av HCC ved å analysere EVs og deres mRNA-innhold.

Ev Click Chip er et avansert verktøy som brukes til å berike HCC EVs. Denne teknologien er basert på en spesifikk form for kjemisk kobling kjent som "klik-kjemi", som gjør det mulig å isolere og analysere EVs fra blodprøver. EV Click Chip består av et Si-nanowire-substrat (SiNWS) som er funksjonalisert med disulfidbindinger, som kobles til terminale tetrazin (Tz)-motiver. Dette substratet er overlagt med et polydimetyldisiloksan (PDMS) kaotisk mikser, som er integrert i en mikrofluidisk chipholder. Dette systemet tillater en svært effektiv enhetsbasert isolasjon av HCC-relaterte EVs, som senere kan brukes til detaljerte analyser. Prosessen begynner med at SiNWS blir behandlet for å introdusere thiolgrupper, som deretter kobles til disulfidbindinger. Etter dette inkuberes de amine-modifiserte nanowirene med tetrazin-grupper for å forberede dem på den påfølgende reaksjonen.

RT-ddPCR, som står for revers transkripsjon-droplet digital PCR, brukes deretter til å kvantifisere mRNA-markører i de berikede EVene. Denne metoden gjør det mulig å målrette spesifikke genetiske signaturer knyttet til HCC, og skaper en digital skåring som kan benyttes til å diagnostisere sykdommen på et tidlig stadium. RT-ddPCR gir ekstremt nøyaktige resultater, og har vist seg å være et kraftig verktøy i påvisning av kreftrelaterte genuttrykk i EVs.

En annen metode som benytter seg av klik-kjemi, er HCC EV Surface Protein Assay, som benytter Click Beads for å berike HCC EVs basert på spesifikke overflateproteiner. Her kobles spesifikke antistoffer, som er målrettet mot HCC-relaterte overflateproteiner, til DNA-barkoder, som deretter blir brukt til å fange opp EV-subpopulasjoner ved hjelp av Click Beads. I denne prosessen benyttes også real-time immuno-PCR for å kvantifisere og analysere de identifiserte subpopulasjonene, noe som gir et dypere innblikk i den molekylære sammensetningen av EVs og deres rolle i HCC-utvikling.

Bruken av Click Beads i denne sammenhengen er spesielt relevant, da den gjør det mulig å berike og analysere EVs med høy spesifisitet. Silika-mikrobeadene som benyttes i Click Beads gjennomgår en kjemisk modifikasjon for å innføre aminogrupper, og deretter graftes methyltetrazin (mTz) på disse beadene for å muliggjøre klik-kjemiske reaksjoner med trans-cyclooctene (TCO)-konjugerte HCC-relaterte antistoffer. Denne prosessen gjør det mulig å fange EVs som bærer bestemte biomarkører knyttet til HCC, som EpCAM, ASGPR1, CD147 og GPC3. Dette er avgjørende for å identifisere tidlige tegn på sykdommen, da disse biomarkørene har vist seg å være tilstede i høy konsentrasjon i EVs fra HCC-pasienter.

Etter at EVene er fanget, blir de analysert med real-time immuno-PCR, en teknikk som gjør det mulig å overvåke og kvantifisere antall målproteiner på EVs over tid. Denne metoden har vist seg å være svært effektiv for å avdekke subpopulasjoner av EVs som kan være viktige i tidlig diagnostisering av HCC. Resultatene fra analysene kan deretter kombineres med genetiske markører for å generere en helhetlig HCC EV ECG-score, som kan brukes til å skille mellom tidlig HCC og levercirrhose.

En viktig tilleggskomponent i disse analysene er evnen til å analysere overflateproteiner på EVs som er assosiert med spesifikke kreftmarkører. Å ha presis tilgang til disse proteinene gir forskerne en dypere forståelse av hvordan HCC utvikler seg på molekylært nivå, og hvordan ulike markører kan indikere tidlige stadier av kreftutvikling. Med tidlig påvisning kan det tas avgjørende beslutninger for pasientbehandling som kan forbedre overlevelsesraten.

Leserne må forstå at de teknologiene som benyttes i disse prosessene ikke bare representerer et teknisk fremskritt, men også et skritt mot en mer presis og individualisert medisin. I fremtiden kan disse metodene føre til en mer effektiv og målrettet behandling av HCC-pasienter, og til og med gi muligheter for tidlig screening av risikopasienter, noe som kan føre til en betydelig reduksjon i kreftdødeligheten.

Hvordan bruker man biomarkører for tidlig påvisning av kreft og hva er de nyeste teknologiene innen dette området?

Biomarkører er stoffer som kan påvises i kroppen og som kan gi informasjon om helsetilstanden, spesielt ved kreftdiagnose. Bruken av biomarkører for tidlig påvisning av kreft har fått økt oppmerksomhet i forskningsmiljøene, og mange metoder er under utvikling for å forbedre nøyaktigheten og effektiviteten i diagnosen. Innen biomarkørforskning har det skjedd betydelige fremskritt, spesielt ved bruk av ny teknologi og avanserte metoder som genuttrykksanalyse, cellebaserte teknikker, og avanserte bildeteknologier.

Moderne teknologi, som generative adversarial networks (GAN) og andre AI-drevne modeller, har gjort det mulig å analysere store datamengder på en rask og presis måte. Dette gir bedre muligheter for tidlig oppdagelse av kreft ved å analysere biomarkører som sirkulerende tumorceller (CTCs) eller cellefritt RNA (cfRNA). Disse teknologiene kan også gi verdifull informasjon om genetiske mutasjoner, noe som hjelper til med å skreddersy behandling for pasienter.

En viktig del av biomarkørforskning er forberedelsen av kunstige plasmasample som brukes i laboratorieforsøk for å simulere virkelige biologiske forhold. Dette gir forskere muligheten til å teste nøyaktigheten til forskjellige biomarkører før de brukes i klinisk praksis. Teknologier som HILIC (Hydrophilic Interaction Liquid Chromatography) forbereder spesifikke glykopeptider, som kan være sentrale biomarkører for sykdommer som hepatocellulær karcinom (HCC), en type leverkreft. Ved å bruke teknikker som LC-Stepped HCD-DDA-MS/MS og LC-Stepped-HCD-PRM-MS/MS kan forskere utføre dyptgående analyser for å avdekke de molekylære underliggende årsakene til kreftutvikling.

For kreft som HCC, er det også viktig å kunne kvantifisere spesifikke mRNA-markører, som gir innsikt i sykdommens fremdrift og respons på behandling. Teknikker som RT-ddPCR og digitale scoringstester på ekstracellulære vesikler (EVs) har blitt utviklet for å gi nøyaktig og rask påvisning av kreftcellens aktivitet i blodet. Den digitale scoren for HCC EV er et eksempel på en moderne biomarkørmetode som kan revolusjonere tidlig kreftdiagnose ved hjelp av real-time immuno-PCR og avansert kjemisk fanging av subpopulasjoner av kreftceller.

Utviklingen innen bildeteknologi har også ført til nye metoder som gir mulighet for presis visualisering av kreftcellene i kroppen. En eksempel er anvendelsen av NIR FLI FRET (Near-Infrared Fluorescence Lifetime Imaging Förster Resonance Energy Transfer) for visualisering av tumorer. Denne teknologien gir forskere muligheten til å studere tumorens mikrostruktur og dens interaksjoner med omkringliggende vev i sanntid, noe som kan gi viktig informasjon om tumorresepsjoner og respons på behandling.

En annen viktig utvikling er i retning av personaliserte behandlingsmetoder, der genetiske mutasjoner og pasientens spesifikke biomarkører brukes til å tilpasse behandlingen. Genomiske verktøy og molekylær analyse gir forskere muligheten til å kartlegge de genetiske predisposisjonene for kreft, noe som gir mulighet for tidlig intervensjon. En av de mest lovende tilnærmingene er genom-wide perspektiv på kreft, som kan gi en mer helhetlig forståelse av hvordan ulike genetiske mutasjoner bidrar til kreftutvikling.

For pasientene er det viktig å forstå hvordan disse teknologiene faktisk fungerer i klinisk sammenheng. Mange av de nevnte metodene er ennå i forskningsfasen, men flere av dem nærmer seg bruk i rutinepraksis. For eksempel er det fortsatt utfordringer knyttet til sensitiviteten og spesifisiteten til biomarkører, og hvordan de skal brukes på best mulige måte i en klinisk setting. For eksempel, i bruken av biopsi og andre invasive metoder, er det alltid risiko for feilaktige diagnoser eller utilsiktet skade på pasienten.

Det er også essensielt at pasienter og helsepersonell er klar over de potensielle etiske dilemmaene som kan oppstå med disse teknologiene. Bruken av genetiske data og bioteknologier kan føre til bekymringer om personvern, samtykke og hvordan informasjonen skal håndteres. I tillegg er det viktig å vurdere hvordan forskjellige land og helsesystemer tilpasser seg nye diagnostiske teknologier, og hvilken innvirkning dette kan ha på rettferdig tilgang til behandling.

Endringene som skjer innen biomarkørforskning og kreftdiagnostikk gir håp for mer effektive, presise og tidlige diagnoser, og potensielt reduserte dødelighetsrater for pasienter. Likevel er det viktig å forstå at implementeringen av disse teknologiene vil være en langsom prosess, hvor forskning, klinisk testing, og tilpasning til praktisk bruk vil være nødvendige skritt før de kan brukes på en bredere skala.